上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院 課題組長
中國“腦計(jì)劃”已于2021年底開始實(shí)施,成為繼美國的“BRAIN Initiative”,歐洲的“Human Brain Project”和日本的“Brain/MINDS”之后,推動腦科學(xué)研究的又一重要舉措。各國“腦計(jì)劃”的一個(gè)核心目標(biāo)是——理解大腦的神經(jīng)活動如何塑造認(rèn)知和產(chǎn)生行為。
1. 神經(jīng)元集群
什么樣的神經(jīng)活動能夠恰當(dāng)?shù)胤从炒竽X功能?
經(jīng)典的神經(jīng)元學(xué)說(neuron doctrine)提出單個(gè)神經(jīng)元是大腦的功能單位。然而,單個(gè)神經(jīng)元常表現(xiàn)明顯的活動不穩(wěn)定性和功能多變性,對相同的外界刺激往往有顯著的差異反應(yīng)(視頻1),難以成為大腦的功能單位。
由于神經(jīng)元并非孤立存在,它們可直接或間接地經(jīng)由物理連接(如突觸)與其它神經(jīng)元形成多樣的功能結(jié)構(gòu);于是神經(jīng)元集群(ensemble)、集合 (assembly)及印記(engram)等相近的功能概念被提出。集群概念與神經(jīng)環(huán)路側(cè)重于物理連接不同,更偏重于描述同一腦區(qū)內(nèi)能夠被反復(fù)地共同激活的一群神經(jīng)元[1, 2]。
集群有何特征?
構(gòu)成集群的神經(jīng)元在空間上可分散分布,也不必具備完全相同的功能偏好[3, 4],但它們的集體活動模式可編碼大腦對外界刺激(如光帶的朝向和運(yùn)動)或內(nèi)在狀態(tài)(如對某場景的恐懼記憶)的應(yīng)答。如今,集群作為大腦的基本功能單位的假說正被接受[1, 2]。本文將以小鼠為模型簡要闡述集群的活動及功能研究。
2.神經(jīng)元集群研究方法
首先如何找到集群?
目前尚未發(fā)現(xiàn)明顯的集群分子標(biāo)記,說明集群的形成很可能由神經(jīng)元的互作模式?jīng)Q定[1],與譜系及遺傳特征關(guān)系不大。因此集群的確定需要同時(shí)記錄一大群神經(jīng)元各自的活動軌跡,這限制了傳統(tǒng)的膜片鉗或微電極記錄方法的使用。
如何高效準(zhǔn)確地同時(shí)記錄大量神經(jīng)元的活動?研究人員根據(jù)神經(jīng)元電活動導(dǎo)致的物理化學(xué)變化(如膜電位升高、鈣離子內(nèi)流、基因轉(zhuǎn)錄及表達(dá)等),開發(fā)了不同的手段。其中,針對大量神經(jīng)元的電壓變化進(jìn)行成像是最直接的方法。目前有不少電壓指示劑(染料或蛋白)能夠根據(jù)神經(jīng)元電壓變化而改變熒光信號強(qiáng)度,可用于檢測動作電位及閾下電位[5]。然而,電壓成像雖擁有近乎完美的時(shí)間分辨率,卻常受限于極低的信噪比(圖2),暫時(shí)難以在大腦功能研究中推廣。
圖2. 電壓成像:電壓敏感指示蛋白的熒光變化能夠反映神經(jīng)元胞體和樹突快速的電壓變化(A),但信噪比低(B)
(修改自Adam, Nature, 2019)
神經(jīng)元被激活會導(dǎo)致一系列即刻早期基因(immediate early gene,IEG),如c-fos、Arc等快速轉(zhuǎn)錄及表達(dá)。通過檢測IEG或者由它們的啟動子所驅(qū)動的熒光蛋白的表達(dá),可標(biāo)記于同一時(shí)段內(nèi)被激活的神經(jīng)元(圖3)。該方法適用于在全腦范圍高效標(biāo)記集群[6],但局限于較低的時(shí)間分辨率(mRNA,約數(shù)分鐘; 蛋白,約數(shù)小時(shí)),難以準(zhǔn)確關(guān)聯(lián)集群功能及行為。
圖3. 即刻早期基因介導(dǎo)的活性標(biāo)記:即刻早期基因的快速轉(zhuǎn)錄及翻譯可用于標(biāo)記被激活的神經(jīng)元
(修改自Zelikowsky, J Neurosci, 2014; Tayler, Curr Biol, 2013)
鈣(離子)成像是目前確定集群及研究其活動的主流技術(shù)選擇。由于神經(jīng)元的動作電位發(fā)放顯著提高其胞體的游離鈣離子濃度,使用對鈣離子濃度高度敏感的熒光染料或蛋白,即可通過捕捉其熒光變化間接檢測神經(jīng)元的活動(圖4)。
雖然鈣離子濃度變化慢于電壓變化,致使鈣成像不如電壓成像般有毫秒級別的時(shí)間分辨率,但其熒光信號足夠強(qiáng)及穩(wěn)定,因而被廣泛用于腦內(nèi)集群的功能研究[7]。
以上方法各有優(yōu)劣,本文將就鈣成像進(jìn)行闡述。
圖4. 鈣成像:根據(jù)對鈣離子敏感的染料(A)或指示蛋白(B)的熒光變化(C),檢測大量神經(jīng)元的電活動
(修改自 方偉群,Cell Rep, 2017; 及未發(fā)表數(shù)據(jù))
鈣成像如何幫助記錄集群活動?
首先需要使用特異結(jié)合鈣離子的熒光指示劑或蛋白探針標(biāo)記大量神經(jīng)元。該目標(biāo)的實(shí)現(xiàn)可通過將具有細(xì)胞滲透性的熒光染料(如OGB1等) 注射入腦內(nèi)(圖4),或通過病毒介導(dǎo)將鈣指示蛋白(如GCaMP或jRGECO等)表達(dá)于腦內(nèi)神經(jīng)元(圖4),或使用編碼GCaMP的轉(zhuǎn)基因小鼠(如Thy1-GCaMP6f或TIGRE等;圖5)。
圖5. GCaMP6f轉(zhuǎn)基因小鼠:轉(zhuǎn)基因小鼠穩(wěn)定表達(dá)鈣指示蛋白用于鈣成像
(修改自Scott, Neuron, 2018)
3.神經(jīng)元集群的功能成像、分析和干預(yù)
接下來需要解答的是如何實(shí)時(shí)捕捉神經(jīng)元的熒光變化?
可通過單光子,雙光子乃至三光子顯微成像系統(tǒng)實(shí)現(xiàn)。由于大腦對長波長的光(如紅外光)散射較少,隨著單、雙及三光子系統(tǒng)所采用的激發(fā)光波長遞增,它們的成像深度也大體遞增。
因此,普通的單光子系統(tǒng)(如共聚焦顯微鏡)通常適用于對很淺層的腦組織成像,或通過植入光纖對深部腦區(qū)和核團(tuán)成像,但受限于較低的空間分辨率。而相對于單光子成像,雙光子鈣成像具有更深的穿透力,更高的光收集效率和更小的光毒性,成為目前腦內(nèi)在體鈣成像的主流方法。通過配合GRIN透鏡的使用,雙光子系統(tǒng)可探測深部腦區(qū),提供高時(shí)空分辨率的鈣影像(圖6)。三光子系統(tǒng)的成像深度可超過1mm,為直接無創(chuàng)觀測深部皮層的集群帶來很大便利(圖6),但目前仍未得到廣泛應(yīng)用[8]。本文將就雙光子鈣成像進(jìn)行闡述。
圖6. 大腦深部鈣成像:使用GRIN透鏡的雙光子成像(A)及三光子顯微成像(B)可對深部腦區(qū)進(jìn)行高分辨率鈣成像
(修改自Jennings, Nature, 2019; Hontani, Sci Adv, 2021)
雙光子鈣成像如何用于研究集群功能?因此,為了準(zhǔn)確判定集群功能,應(yīng)將小鼠置于具體的情境或行為之下,并實(shí)時(shí)捕捉其大量神經(jīng)元的活動軌跡。由于集群對刺激、環(huán)境和行為的反應(yīng)存在動態(tài)變化,研究者還應(yīng)較長時(shí)間地記錄集群的鈣活動,從中歸納出神經(jīng)活動的模式,判定集群的功能偏好及特異性等。
以初級視皮層的layer2/3錐體細(xì)胞為例,我們發(fā)現(xiàn)給予小鼠特定模式的視覺刺激(如特定朝向的移動光柵),能夠激活相似的一群神經(jīng)元,而這群神經(jīng)元對其它朝向的移動光柵反應(yīng)明顯較弱。因此,這群神經(jīng)元組成一個(gè)偏好該朝向視覺刺激的集群。這個(gè)集群在不同時(shí)間對不同朝向的活動強(qiáng)度反映了它的功能選擇性,可被定量分析(圖7)。
圖7. 集群功能判定:集群對特定視覺特征的功能偏好及選擇性可被定量分析
(方偉群,未發(fā)表數(shù)據(jù))
在體雙光子鈣成像結(jié)果能夠提示集群功能與認(rèn)知及行為的相關(guān)性,還需再結(jié)合集群調(diào)控技術(shù)(如光遺傳學(xué)等),驗(yàn)證二者的因果關(guān)系。
然而,傳統(tǒng)的光遺傳學(xué)調(diào)控方式存在明顯缺陷:
1) 常采取面刺激方式,在短時(shí)間內(nèi)無差別地激活或抑制表達(dá)光敏蛋白的大量神經(jīng)元,其強(qiáng)度遠(yuǎn)高于生理狀態(tài)下的神經(jīng)活動強(qiáng)度,很可能造成假象;
2) 雖然采用遺傳標(biāo)記等方法可僅在特定細(xì)胞類型中表達(dá)光敏蛋白,實(shí)現(xiàn)對細(xì)胞類型或投射的特異性干預(yù),但對于相鄰的同類型神經(jīng)元仍無能為力。雙光子光遺傳學(xué)解決了這一難題(圖8),比如通過使用空間光調(diào)節(jié)器(spatial light modulator, SLM)將一束激光分為若干小光束,而每一小光束僅聚焦于同一集群的特定神經(jīng)元上,同時(shí)激活或抑制它們。
再結(jié)合使用定位于胞體的鈣離子探針和光敏蛋白,可進(jìn)一步減少由于神經(jīng)突起交錯導(dǎo)致的非特異性刺激。因此,雙光子光遺傳學(xué)可實(shí)現(xiàn)對任意神經(jīng)元的光刺激,精準(zhǔn)地調(diào)控集群[9]。
圖8. 雙光子同步鈣成像及光遺傳學(xué):雙光子光遺傳學(xué)刺激(A),結(jié)合胞體定位的鈣指示蛋白(B)和光敏蛋白(C),可實(shí)現(xiàn)精準(zhǔn)鈣成像和活性調(diào)控
(修改自Yang, eLife, 2018; Shemesh, Nat Neurosci, 2017; Shemesh, Neuron, 2020)
雙光子技術(shù)調(diào)控的集群功能是否反映認(rèn)知及行為?以初級視皮層的研究為例,研究者可根據(jù)雙光子鈣成像的結(jié)果,確定編碼特定視覺特征(如光柵的朝向)的集群,再以雙光子光遺傳學(xué)技術(shù)特異地激活該集群,對小鼠植入假的視覺信號,活化其下游的環(huán)路,使小鼠誤認(rèn)為接受到特定指令而啟動視覺誘發(fā)的飲水行為(圖9)[10]。
在另一例子中,作者采用類似的“全光學(xué)”雙光子成像和調(diào)控系統(tǒng),識別及激活海馬體中的位置細(xì)胞集群,改變小鼠的空間記憶(圖10)[11]。此類研究證明了精準(zhǔn)地操縱特定集群的活動可改變小鼠的認(rèn)知及行為。
圖9. 集群與視覺感知:雙光子光遺傳學(xué)激活視覺皮層神經(jīng)元集群(A),誘發(fā)視覺感知及視覺引導(dǎo)行為(B)
(修改自Marshel, Science, 2019)
圖10. 集群與空間記憶:雙光子“全光學(xué)”成像及調(diào)控系統(tǒng)(A)能夠精準(zhǔn)激活海馬體中的位置細(xì)胞集群,改變小鼠的空間記憶(B)
(修改自Zhang, Nat Methods, 2018; Robinson, Cell, 2020)
以上對集群的功能成像、分析和干預(yù)是依次分別開展的,并非最理想的選擇。能否做到三個(gè)步驟同步進(jìn)行,即所謂“閉環(huán)”操縱集群[12]?
這要求系統(tǒng)能夠 “在線”實(shí)現(xiàn)準(zhǔn)確的活性捕捉,快速的功能判定和高效的活性調(diào)控。這樣的閉環(huán)系統(tǒng)可以迅速反映集群與行為的即時(shí)關(guān)聯(lián),并及時(shí)反饋,調(diào)控集群而改變行為,很可能是研究集群功能與行為的最佳方案(圖11)[12, 13]。
在這樣的方案下,研究者可選擇性地激活特定一群神經(jīng)元,重現(xiàn)或改變原有集群的活動模式,甚至設(shè)計(jì)構(gòu)建新的集群,實(shí)現(xiàn)模擬、植入乃至矯正認(rèn)知的目的,有望為正常及疾病大腦的神經(jīng)機(jī)制研究提供獨(dú)特視角和工具。
圖11. 雙光子“閉環(huán)”系統(tǒng)能夠同步讀寫集群活動,操控動物行為
(修改自Hausser, N Engl J Med, 2021)
4. 神經(jīng)元集群與神經(jīng)疾病
由此引出一個(gè)新問題,集群變化是否可作為腦疾病的神經(jīng)病理指標(biāo)?
由于雙光子系統(tǒng)能夠準(zhǔn)確定位集群的構(gòu)成神經(jīng)元的空間分布,精準(zhǔn)追蹤及改變其活動軌跡,使得集群的結(jié)構(gòu)和功能具備高度可定量性。集群的功能判定是基于特定情境和行為下神經(jīng)元的集體活動模式,反映了神經(jīng)元之間的功能互作,提示集群變化或許可作為神經(jīng)環(huán)路功能的內(nèi)表型(endophenotype)。
確實(shí),集群在腦疾病(如自閉癥,精神分裂等)小鼠模型中產(chǎn)生明顯變化[4, 14],與采用其它腦功能檢測技術(shù)(如fMRI,微電極陣列等)得到的結(jié)論吻合。但是,目前對腦疾病模型中集群的研究仍處于特征描述階段,未能有效調(diào)控集群,重現(xiàn)或逆轉(zhuǎn)疾病癥狀。因此,集群變化是否可作為腦疾病的重要貢獻(xiàn)因素,其充分性和必要性都尚未得到深入探究。
為了更好揭示集群與認(rèn)知和行為的關(guān)系,有必要闡明集群的運(yùn)行和演進(jìn)機(jī)制。我們需要了解集群的結(jié)構(gòu)及功能如何形成與發(fā)展,存在何種可塑性和關(guān)鍵期,有何獨(dú)特的細(xì)胞互作機(jī)制,同一腦區(qū)功能相關(guān)的集群如何競爭(competition)、互補(bǔ)(complementation)、分離 (separation)和整合(integration),以及不同腦區(qū)的上下游集群如何溝通信息。
通過對集群機(jī)制的研究,我們有望驗(yàn)證:操控集群功能是否可以重現(xiàn)或逆轉(zhuǎn)疾病的核心表型。這些問題也是本課題組的研究興趣所在。我們有理由相信,基于集群成像的高時(shí)空分辨率及光調(diào)控的精準(zhǔn)性,對集群的深入研究將有助于在介觀層面解析神經(jīng)環(huán)路的功能與可塑性,助力對大腦運(yùn)行規(guī)律的解碼,使人類更懂得人類。Olympus FVMPE-RS多光子顯微鏡,專為活體熒光成像設(shè)計(jì),可配合同步實(shí)時(shí)光刺激系統(tǒng),在時(shí)間和空間上完美實(shí)現(xiàn)飛秒脈沖激光對神經(jīng)元細(xì)胞的精確空間光刺激及鈣信號的同步快速采集,準(zhǔn)確靈敏捕捉每個(gè)轉(zhuǎn)瞬即逝的信號。
并且,全套光路在1600nm范圍進(jìn)行光學(xué)校正,保證高透過率,能夠支持三光子等活體深層神經(jīng)元集群成像與調(diào)控的拓展開發(fā)。一直都是廣大神經(jīng)科學(xué)家洞悉大腦的神兵利器。
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1. Yuste R. From the neuron doctrine to neural networks. Nat Rev Neurosci 2015; 16(8):487-497.