由于
T細(xì)胞具有多種亞型,所以研究膜結(jié)合T細(xì)胞受體的技術(shù)困難,但在某些情況下,您希望能夠做到這一點(diǎn),例如分析哪些免疫記憶已被誘導(dǎo)以測量個(gè)體對(duì)特定抗原的反應(yīng)程度。此時(shí), 有多種方法可以實(shí)現(xiàn),主要分為兩大類:一種是通過測量特征性反應(yīng)(例如細(xì)胞因子分泌)來檢測 T 細(xì)胞對(duì)刺激作出反應(yīng)的激活,另一種是通過細(xì)胞的特異性來分析T細(xì)胞受體。
下面總結(jié)了一下 T細(xì)胞分析的6種方法:
1. 限制稀釋培養(yǎng)
該技術(shù)涉及通過使用不同稀釋度的細(xì)胞來測量對(duì)特定抗原產(chǎn)生反應(yīng)的 T 細(xì)胞的頻率,然后測量無反應(yīng)的孔數(shù)。
不用過多計(jì)算,簡而言之,每個(gè)孔中活性
T細(xì)胞的分布應(yīng)遵循泊松分布隨機(jī)分布原則。我們可以使用這些信息來計(jì)算我們擁有的活躍 T 細(xì)胞的數(shù)量。從泊松分布中我們知道,如果反應(yīng)陰性的孔比例為 37%,那么每個(gè)孔中平均有一個(gè)抗原特異性 T 細(xì)胞。因此讀取產(chǎn)生 37% 陰性孔的細(xì)胞數(shù),然后我們可以計(jì)算響應(yīng)細(xì)胞的頻率。例如,如果以每孔 5000 個(gè)細(xì)胞接種細(xì)胞導(dǎo)致 37% 的細(xì)胞呈陰性,我們知道我們有 1/5000 個(gè)活躍細(xì)胞的頻率。啟動(dòng)或免疫小鼠后,頻率相應(yīng)增加,就表明抗原正在驅(qū)動(dòng)增殖。
2. ELISPOT
如果需要對(duì)細(xì)胞進(jìn)行表型分析,有限稀釋培養(yǎng)法就顯得費(fèi)力些。此時(shí)可以可以通過細(xì)胞因子的產(chǎn)生來測量 T 細(xì)胞的反應(yīng),即:ELISPOT(酶聯(lián)免疫斑點(diǎn))進(jìn)行檢測。
方法步驟如下:在使用非反應(yīng)性血清進(jìn)行封閉之前,可以在 PVDF(聚偏二氟乙烯)覆蓋的微孔板上涂上單克隆或多克隆抗體,并將板上的 T 細(xì)胞與一種或多種物質(zhì)一起培養(yǎng)以激活細(xì)胞因子的分泌。然后細(xì)胞因子被包被的抗體捕獲。接下來,在添加二抗之前清洗板以去除碎片、未結(jié)合的抗體和培養(yǎng)基,二抗與顯色(著色)底物(通常是帶有辣根過氧化物酶或堿性磷酸酶的鏈霉親和素)偶聯(lián),然后再次洗滌。然后,您可以將目的細(xì)胞因子視為可見點(diǎn),并分別使用顯微鏡手動(dòng)或自動(dòng)使用自動(dòng)閱讀器對(duì)其進(jìn)行計(jì)數(shù)。這種方法的缺點(diǎn)在于 雖然量化產(chǎn)生抗體的 T 細(xì)胞的數(shù)量方面相對(duì)較多,但在描述單個(gè)細(xì)胞的細(xì)胞因子產(chǎn)生譜時(shí)仍然受到限制。
3. 細(xì)胞內(nèi)染色
細(xì)胞內(nèi)染色是指在固定和透化細(xì)胞之前用蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)抑制劑(例如莫能菌素或布雷菲爾德菌素)處理來抑制細(xì)胞因子的分泌,并針對(duì)您的細(xì)胞因子的熒光標(biāo)記抗體,并通過流式細(xì)胞術(shù)進(jìn)行測量的方法。其缺點(diǎn)在于會(huì)殺死細(xì)胞 。
4. 細(xì)胞因子捕獲
細(xì)胞因子捕獲法的原理是來自不同抗體的兩個(gè)重鏈和輕鏈對(duì)組合在一起,得到帶有兩個(gè)不同配體的兩個(gè)抗原結(jié)合位點(diǎn)的雜交抗體。這些雙特異性抗體可用于檢測細(xì)胞因子。一種配體是 T 細(xì)胞特異的標(biāo)記物,另一種是目標(biāo)細(xì)胞因子特異的標(biāo)記物。活化的 T 細(xì)胞用蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)運(yùn)抑制劑處理,因此細(xì)胞因子在細(xì)胞內(nèi)積累。然后使用雜交抗體來捕獲和檢測 T 細(xì)胞表面標(biāo)記的細(xì)胞因子。甲雜交抗體可用于執(zhí)行此操作。雜交抗體由對(duì)目標(biāo)細(xì)胞因子和常見細(xì)胞表面蛋白(如 MHC I 類)特異的抗體制成。雜交抗體結(jié)合活化的 T 細(xì)胞。如果 T 細(xì)胞分泌細(xì)胞因子,則與細(xì)胞表面結(jié)合的雜交抗體會(huì)捕獲它們。然后使用針對(duì)目標(biāo)細(xì)胞因子的標(biāo)記二抗檢測分泌細(xì)胞因子的 T 細(xì)胞。
5. 四聚體染色
T 細(xì)胞反應(yīng)也可以通過其受體的特異性來測量,使用熒光標(biāo)記的四聚體或特定的 MHC:肽復(fù)合物。MHC :肽四聚體由重組 MHC 分子制成,其中特定肽與生物素-鏈霉親和素結(jié)合。表達(dá)相應(yīng)特異性的 T 細(xì)胞結(jié)合這些四聚體。然后對(duì)這些進(jìn)行染色以進(jìn)行檢測,并可以通過流式細(xì)胞術(shù)進(jìn)行分析!
6. 光譜分析和生物傳感器檢測
T細(xì)胞群的多樣性可以通過光譜分析來定義。在這里,CDR3 區(qū)域通過凝膠電泳可視化,讓您可以比較表達(dá)相同 V 段的受體。然后可以使用生物傳感器測定來測量配體與其互補(bǔ)抗原受體的結(jié)合和解離率。
待測配體固定在鍍金表面。然后使可溶性 T 細(xì)胞受體與結(jié)合的配體接觸并結(jié)合。一段時(shí)間后,他們分離。可以使用生物傳感器實(shí)時(shí)測量發(fā)生這種情況的速率。附著和脫離的速率由生物傳感器監(jiān)測,該生物傳感器可以有效進(jìn)行全內(nèi)反射并 結(jié)合對(duì)玻璃芯片表面偏振光源的影響來測量鍍金玻璃芯片表面分子的結(jié)合. 它檢測反射光束的角度和強(qiáng)度的任何波動(dòng),并將其與時(shí)間繪制成圖以創(chuàng)建“傳感圖” 。
也可以結(jié)合受體而不是配體。當(dāng)系統(tǒng)飽和或達(dá)到結(jié)合和解離之間的平衡狀態(tài)時(shí),達(dá)到最大結(jié)合后,曲線將趨于穩(wěn)定,表明不再發(fā)生結(jié)合。然后可以洗掉未結(jié)合的分子,在繼續(xù)洗滌后,它們都開始從它們結(jié)合的蛋白質(zhì)上脫落。測量相互作用的曲線將開始下降,顯示發(fā)生解離的速率。
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