作者：Khandaker Siddiquee and Ma Sha, Eppendorf Inc., Enfield, CT, U.S.A

使用裝載微載體的小型生物反應(yīng)器如旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶，擴(kuò)增培養(yǎng)干細(xì)胞（包括間充質(zhì)干細(xì)胞）被證明是成功的。而在本研究中我們使用了傳統(tǒng)錐形瓶，為采用微載體進(jìn)行間充質(zhì)干細(xì)胞擴(kuò)增開發(fā)了一種簡單的替代方法。這種方法需要一臺新型的內(nèi)置搖床功能的 CO₂ 培養(yǎng)箱，例如 Eppendorf New Brunswick^TM S41i CO₂ 培養(yǎng)箱。利用裝載微載體的錐形瓶搖瓶和旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶來對比脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞（ADMSCs）的擴(kuò)增效果。兩個(gè)對照實(shí)驗(yàn)都使用含有 0.5g 微載體的干細(xì)胞培養(yǎng)液 40 mL，ADMSCs 接種密度都為 3×10³ 個(gè)細(xì)胞 /cm²。
 
細(xì)胞培養(yǎng)周期為 12 天，每日進(jìn)行采樣分析細(xì)胞生長狀態(tài)、生物化學(xué)和代謝產(chǎn)物指標(biāo)進(jìn)行對比。細(xì)胞密度比較結(jié)果表明，脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)在對數(shù)生長期（4 天）和平臺期（9 天）中， 在錐形瓶條件下擴(kuò)增比在旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶條件下細(xì)胞數(shù)量高 1.6-1.8倍。日常代謝產(chǎn)物分析顯示，培養(yǎng)早期旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶中氨水平較高，但錐形瓶中沒有此現(xiàn)象，這可能是由于攪拌子產(chǎn)生的剪切力造成的干細(xì)胞損傷所引起的。

干細(xì)胞由于具有自我更新能力并能分裂很長一段時(shí)間，從而被視作未分化細(xì)胞。當(dāng)提供合適的生長因子及條件時(shí)，干細(xì)胞具有分化成不同的特化細(xì)胞的能力。干細(xì)胞可大致分為：胚胎干細(xì)胞、成體干細(xì)胞和誘導(dǎo)多功能干細(xì)胞（iPS）。成體干細(xì)胞可進(jìn)一步通過它們的組織來源特征性表達(dá)，比如：造血干細(xì)胞、乳腺干細(xì)胞、腸干細(xì)胞、間充質(zhì)干細(xì)胞、內(nèi)皮干細(xì)胞、神經(jīng)干細(xì)胞和毛囊干細(xì)胞。大部分成體干細(xì)胞研究使用的是造血干細(xì)胞或者脂肪來源的間充質(zhì)干細(xì)胞 ¹。像其他的成體干細(xì)胞一樣， 脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞（AdMSCs）可顯示所有干細(xì)胞常規(guī)標(biāo)志物， 并能在合適的生長條件下分化成不同類型的特化細(xì)胞。與其他間充質(zhì)干細(xì)胞相比，脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞由于可從脂肪組織中大量分離并對凋亡耐受所以更具優(yōu)勢 ²。
 

盡管間充質(zhì)干細(xì)胞在藥物更新、藥物篩選以及藥物研發(fā)中具有諸多優(yōu)勢，但其應(yīng)用受到工業(yè)或臨床運(yùn)用所需數(shù)量的限制 ³。在本研究中，我們開發(fā)了一種簡單的錐形瓶培養(yǎng)技術(shù)來擴(kuò)增基于微載體的間充質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)，從而可將培養(yǎng)規(guī)模放大至更大的生物反應(yīng)器。裝載微載體的錐形瓶需同時(shí)控制攪拌速度和 CO₂ 濃度，我們可利用 Eppendorf New Brunswick^TM S41i CO₂ 恒溫?fù)u床進(jìn)行培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)。

Eppendorf  New  BrunswickTM  S41i  CO2  恒溫?fù)u床，為懸浮細(xì)胞及貼壁細(xì)胞的培養(yǎng)而設(shè)計(jì)，配備可靠的 New Brunswick 搖床驅(qū)動軸，并可精確控制溫度和CO2 濃度。先進(jìn)特性包括帶密封圈的內(nèi) / 外門、高溫消毒功能以及與同類產(chǎn)品相比 CO2 氣體消耗量較少 4。

脂肪來源的間充質(zhì)干細(xì)胞來源于 ATCC（PCS-500-011）第二代細(xì)胞，以 5000 個(gè)細(xì)胞 /cm² 接種于 Eppendorf T-75 cm² 細(xì)胞培養(yǎng)瓶中，使用 15 mL 添加有 2% 胎牛血清、5 ng/mL 重組人堿性成纖維細(xì)胞生長因子、5 ng/mL 重組人酸性成纖維細(xì)胞生長因子、5 ng/mL 重組人上表皮生長因子和 2.4 mM L- 丙氨酰 - L 谷氨酰胺的間充質(zhì)干細(xì)胞基礎(chǔ)培養(yǎng)基（ATCC）。

 

在實(shí)驗(yàn)開始之前， 將 0.5g 125-212 微米聚苯乙烯微載體（SoloHill^®）（180 cm² 適用于 50 mL 的培養(yǎng)）轉(zhuǎn)移到經(jīng)過硅化處理（(Sigmacoat^®，Sigma) 的250 mL 旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶（Corning^®） 以及含有 25-30 mL PBS 的錐形瓶中（Schott^®, Duran）。隨后，所有培養(yǎng)瓶在 121 °C 下至少高溫滅菌 30 分鐘。微載體可放置在培養(yǎng)瓶或錐形瓶的底部，使用裝有 25 mL 或 50 mL 移液管的 Easypet^®（Eppendorf）電動助吸器小心注入經(jīng)高溫滅菌的 PBS 緩沖液。脂肪來源的間充質(zhì)干細(xì)胞最初以 3000 個(gè)細(xì)胞 /cm² 的密度接種于兩種培養(yǎng)瓶中，每個(gè)均裝載 40 mL 間充質(zhì)干細(xì)胞基礎(chǔ)培養(yǎng)基。

 

為了培養(yǎng)初期的細(xì)胞貼壁，Eppendorf New Brunswick^TM S41i CO₂ 恒溫?fù)u床以及旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶（ 安置于 Eppendorf Galaxy^® 170 R CO₂ 培養(yǎng)箱內(nèi)部）的攪拌轉(zhuǎn)速皆維持在 50 rpm，在 37 °C、5%CO₂ 濃度條件下培養(yǎng) 2 小時(shí)。之后，細(xì)胞培養(yǎng)體積最終被調(diào)節(jié)至 50 mL，其中 10 mL 的培養(yǎng)基中含有血清，從而使得最終的胎牛血清濃度達(dá)到 4%，并使生長添加物的最終濃度達(dá)到目標(biāo)（重組人堿性成纖維細(xì)胞生長因子、重組人堿性成纖維細(xì)胞生長因子和重組人上表皮生長因子的最終濃度達(dá) 10 ng/ml、L- 丙氨酰 -L 谷氨酰胺的最終濃度達(dá) 4.8 mM）。在添加 FBS 和生長添加物之后，旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶和 New Brunswick^TM S41i CO₂ 恒溫?fù)u床攪拌轉(zhuǎn)速都增至 70 rpm。接種 18 小時(shí)至24 小時(shí)之后，取 1 mL 包含有培養(yǎng)基和微載體的均勻樣品用于顯微鏡觀察、細(xì)胞計(jì)數(shù)和生化分析。

通過血球計(jì)數(shù)板計(jì)算微載體上的細(xì)胞。為了完成計(jì)數(shù)，從試管中移取上清液與含結(jié)晶紫的檸檬酸溶液（0.1 M 檸檬酸溶液中添加 0.1 % 結(jié)晶紫）等體積混合。試管中的內(nèi)容物在 37 °C下培養(yǎng) 1 個(gè)小時(shí)或過夜，渦旋幾秒鐘以釋放被染色的細(xì)胞核。使用血球計(jì)數(shù)板對細(xì)胞核計(jì)數(shù)。
 
生化以及代謝分析
細(xì)胞計(jì)數(shù)收集的上清液被用于生化以及代謝測量，使用 YSI 2950 自動生化分析儀。

干細(xì)胞表面標(biāo)記物分析
為評估脂肪來源間充質(zhì)干細(xì)胞擴(kuò)增后的質(zhì)量，并確保微載體培養(yǎng)期間保留了干細(xì)胞的標(biāo)志物，CD44 和 CD90 的特定熒光免疫分析通過如下步驟進(jìn)行。在使用微載體的培養(yǎng)末期，分別從轉(zhuǎn)瓶和錐形瓶中取出 5 mL 樣品。當(dāng)微載體沉淀于底部上清液被移除后，在室溫條件下使用 PBS 潤洗負(fù)載有細(xì)胞的微載體三次，隨后在多聚甲醛中固定 30 分鐘，再用 PBS 潤洗三次。在室溫下，將包含有細(xì)胞的微載體在 5% PBS 中浸泡 1 小時(shí)， 使用FITC - 連結(jié)抗人CD44 抗體（Biolegend）和APC 連結(jié)抗人 CD90（Biolegend）抗體溶液免疫染色樣品，在室溫條件下維持 1 小時(shí)。隨后，在室溫條件下使用 PBS 潤洗包含有細(xì)胞的微載體五次，并且使用 EVOS FL 熒光顯微鏡觀察。

從錐形瓶和轉(zhuǎn)瓶中收獲脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞，并置于 50 mL 試管中。當(dāng)微載體沉淀于試管底部之后， 移除上清液， 使用DPBS 清洗細(xì)胞。隨后，在 37 °C 下使用 5 mL 預(yù)熱過的胰蛋白酶 - EDTA 溶液處理 10 分鐘。在培養(yǎng)期間，隨機(jī)渦旋試管2 秒鐘，并加入等體積的胰蛋白酶中和溶液。微載體沉淀于試管底部，隨即收集上清液。使用 DPBS 清洗微載體 2-3 次，并收集盡量多的上清液于 50 mL 試管中。潤洗之后 120 g 離心5 分鐘，脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞被收集于試管底部，并在 5 mL 間充質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)基中重懸。以 18000 個(gè)細(xì)胞 /cm² 的密度接種于 24 孔板中。使用 ATCC 分化分析試劑盒分析脂肪細(xì)胞和骨細(xì)胞的分化情況。分化的脂肪細(xì)胞和骨細(xì)胞可以依據(jù) Oil red O 或者Alizarin red S 試劑盒（ScienCell^®）廠商的指示將特定細(xì)胞染色來鑒別。使用 OLYMPUS CK40 顯微鏡觀察。

為了比較錐形瓶和轉(zhuǎn)瓶培養(yǎng)，在兩種培養(yǎng)體系中脂肪來源的間充質(zhì)干細(xì)胞以 3000 個(gè)細(xì)胞 /cm² 接種。細(xì)胞培養(yǎng)比較持續(xù)了12 天，每天取樣分析細(xì)胞生長、生化以及代謝情況。通過細(xì)胞生長對比發(fā)現(xiàn)，使用錐形瓶培養(yǎng)脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞，其細(xì)胞密度在對數(shù)生長早期（第 4 天）以及平臺期（第 9 天）是轉(zhuǎn)瓶培養(yǎng)的 1.6 到 1.8 倍（圖 1 A）。生化以及代謝分析揭示在搖瓶中培養(yǎng)細(xì)胞時(shí)葡萄糖含量從 1.09 g/L 降至 0.548 g/L，在轉(zhuǎn)瓶中培養(yǎng)時(shí)葡萄糖含量則降至 0.798 g/L。而在培養(yǎng) 12 天之后，錐形瓶中的乳酸含量從 0.042 g/L 升高至 0.396 g/L，在轉(zhuǎn)瓶

中則升高至 0.259 g/L（圖 1B 和 1C）。錐形瓶中較高的葡萄糖消耗速率以及乳酸生成速率表明在錐形瓶條件下干細(xì)胞生長更快。此外，在生長早期（第 4 天）轉(zhuǎn)瓶中的氨累積濃度（2.4 mM）是錐形瓶培養(yǎng)（1.3 mM）的 1.8 倍（圖 1D）。文獻(xiàn)證實(shí)即使是低濃度的氨（1.9 mM）也會抑制間充質(zhì)干細(xì)胞的生長 5。轉(zhuǎn)瓶培養(yǎng)顯示在培養(yǎng)初期及隨后的培養(yǎng)過程中氨的濃度已經(jīng)超過了 2 mM，表明轉(zhuǎn)瓶培養(yǎng)中較慢的細(xì)胞生長速率可能由氨累積誘導(dǎo)的毒害作用所引起。在培養(yǎng)初期轉(zhuǎn)瓶培養(yǎng)中氨的累積與錐形瓶相比有所增加表明了由攪拌子引起的剪切力可能對干細(xì)胞產(chǎn)生傷害。攪拌子在低速時(shí)有“停頓和啟動”的動作，在低攪拌速度的條件下，精確的轉(zhuǎn)速控制是不可能的。

 

為了判定脂肪來源的間充質(zhì)干細(xì)胞在錐形瓶培養(yǎng)過程中是否保持干細(xì)胞特性，我們分析了干細(xì)胞表面標(biāo)記物的免疫染色以及分化，使用干細(xì)胞表面標(biāo)記抗體，如 FITC- 連結(jié)抗人 CD44 抗體和 APC 連結(jié)抗人 CD90 抗體對包含有脂肪來源間充質(zhì)干細(xì)胞的微載體進(jìn)行免疫染色，并且表明了脂肪來源的間充質(zhì)干細(xì)胞在錐形瓶培養(yǎng)過程中保持了干細(xì)胞特性（圖 2A 和 B）。對于脂肪細(xì)胞和骨細(xì)胞的分化分析，脂肪來源的間充質(zhì)干細(xì)胞從微載體上收集并接種于包含有脂肪細(xì)胞或骨細(xì)胞分化培養(yǎng)基的 24 孔板中。培養(yǎng) 17 天之后，使用Oil red O 或者Alizarin red S 染色溶液進(jìn)行染色。顯微鏡觀察表明搖瓶培養(yǎng)中大部分的脂肪來源間充質(zhì)干細(xì)胞成功分化成脂肪細(xì)胞或者骨細(xì)胞（圖 3A 和B）。
 

 

 

與旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶培養(yǎng)體系相比，使用錐形瓶培養(yǎng)擴(kuò)增間充質(zhì)干細(xì)胞成為一種可行以及簡單的替代方法。這種新方法依賴于一種新型的內(nèi)置搖床功能的二氧化碳培養(yǎng)箱，例如 New Brunswick^TM S41i CO₂ 恒溫?fù)u床。New Brunswick^TM S41i CO₂ 恒溫?fù)u床降低了剪切力，減少了攪拌子對細(xì)胞所產(chǎn)生的潛在危害，緩解了在CO₂ 培養(yǎng)箱中裝載旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)儀帶來污染的風(fēng)險(xiǎn)并降低了實(shí)驗(yàn)的復(fù)雜性。由于在 New Brunswick^TM S41i CO₂ 恒溫?fù)u床中可以放置大量的錐形瓶，這同樣極大增加了培養(yǎng)細(xì)胞的能力。在轉(zhuǎn)瓶培養(yǎng)的案例中，傳統(tǒng)的、沒有主動冷卻功能的培養(yǎng)箱只能應(yīng)付少量旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)儀發(fā)出的熱量，容易導(dǎo)致溫度過高這也顯著限制了使用轉(zhuǎn)瓶擴(kuò)增細(xì)胞的應(yīng)用。與之相比，使用New Brunswick^TM S41i CO₂ 恒溫?fù)u床培養(yǎng)干細(xì)胞更具有優(yōu)勢，該方法減少了細(xì)胞擴(kuò)增時(shí)遇到的瓶頸， 并為大規(guī)模用于生產(chǎn)臨床材料的工業(yè)生物反應(yīng)器接種提供了高質(zhì)量的干細(xì)胞。