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                                                              當前位置 > 首頁 > 技術文章 > Nanolive新突破----無標記角質細胞板層小體和透明角質顆粒研究

                                                              Nanolive新突破----無標記角質細胞板層小體和透明角質顆粒研究

                                                              瀏覽次數(shù):5717 發(fā)布日期:2019-9-19  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負

                                                              概述

                                                              角質細胞和表皮

                                                              皮膚的表層即表皮,主要由角質細胞構成,占表皮層總細胞的90% [1], [2]。表皮在免疫反應中起重要作用,通過屏障作用阻止細菌、病毒、真菌及寄生蟲的侵入 [1] 。表皮的防疫功能還包括保護水分丟失,對抗熱和UV輻射等 [3]。

                                                              表皮分為基底層、棘層、顆粒層、透明層和角質層(圖1)[4]。這些層含不同階段的角質細胞 。角質形成過程包括一系列有絲分裂,這些分裂始于基底層,并導致細胞質被角質蛋白代替。角化過程結束時,角質細胞死亡;角質層中為扁平、無核、高度角化的鱗狀細胞[4]。

                                                              3D Cell Explorer實時觀測角質細胞中板層小體和透明角質顆粒
                                                              視頻鏈接:https://mp.weixin.qq.com/s/BDa_fPQ-OvCXdowT1jz6hw

                                                              板層小體和透明角質顆粒分析


                                                              觀測時發(fā)現(xiàn)顆粒層的角質細胞存在兩個特征結構:板層小體和透明角質顆粒 (圖 2) [2]。透明角質顆粒包含參與角蛋白纖維聚集和細胞膜形成的蛋白,板層小體包含脂質體并與質膜融合,以將其分泌到細胞外。就其細胞大小而言,透明角質顆粒(高達幾個微米)普遍比板層小體(200-300nm)大[5] [6],3D cell explorer 可以可視化大于167nm的結構,因此使得兩種結構都清晰可辨。
                                                              細胞核分析細胞核分析

                                                              不同于我們以前的NHEK拍攝的特征,在這個樣本中,細胞核看起來是一個復雜的、高度分隔的細胞器(圖3)。

                                                              這一現(xiàn)象可以解釋為從基底層向顆粒層過渡過程中的多重分裂作用效果[7],[8],已知這些分裂主要包括在基底層水平上的一些不對稱分裂,導致不同的細胞命運和大小 [9],[10]。

                                                              事實上,與圖左下角相鄰的細胞相比,中間的細胞似乎尺寸明顯增大。

                                                               

                                                              [1]  J. A. McGrath, R. A. J. Eady, and F. M. Pope, “Anatomy and Organization of Human Skin,” in Rook’s Textbook of Dermatology, Malden, Massachusetts, USA: Blackwell Publishing, Inc., pp. 45–128.

                                                              [2] P. A. Kolarsick, M. Ann Kolarsick, and C. Goodwin, “Anatomy and Physiology of the Skin,” 2006.

                                                              [3]  Practical immunodermatology. Springer, 2017.

                                                              [4] H. Yousef, M. Alhajj, and S. Sharma, Anatomy, Skin (Integument), Epidermis. StatPearls Publishing, 2019.

                                                              [5] A. Gedeon Matoltsy and M. N. Matoltsy, “THE CHEMICAL NATURE OF KERATOHYALIN GRANULES OF THE EPIDERMIS.”

                                                              [6] R. Joshi, “Learning from eponyms: George F. Odland and Odland bodies,” Indian Dermatol. Online J., vol. 5, no. 3, p. 334, Jul. 2014.

                                                              [7] “Polyploid cells and nuclei in keratinocyte primary cultures. (a-c)… | Download Scientific Diagram.” [Online]. Available: https://www.researchgate.net/figure/Polyploid-cells-and-nuclei-in-keratinocyte-primary-cultures-a-c-photographs-of_fig4_12400529. [Accessed: 27-Aug-2019].

                                                              [8] M. R. Gdula et al., “Remodeling of Three-Dimensional Organization of the Nucleus during Terminal Keratinocyte Differentiation in the Epidermis,” J. Invest. Dermatol., vol. 133, no. 9, pp. 2191–2201, Sep. 2013.

                                                              [9] M. I. Koster and D. R. Roop, “Asymmetric Cell Division in Skin Development: A New Look at an Old Observation,” Dev. Cell, vol. 9, no. 4, pp. 444–446, Oct. 2005.

                                                              [10] H.-Y. JIA et al., “Asymmetric stem-cell division ensures sustained keratinocyte hyperproliferation in psoriatic skin lesions,” Int. J. Mol. Med., vol. 37, no. 2, pp. 359–368, Feb. 2016.

                                                               

                                                               


                                                              Nanolive 3D CX-A 在角質細胞研究中的優(yōu)勢

                                                              ﹡非侵入式或無需染色標記;

                                                              ﹡基于細胞物理折射率RI的全息3D成像;

                                                              ﹡實驗處理低于5分鐘,細胞無損;

                                                              1.7秒快速3D全息成像;

                                                              ﹡任意基于折射率的數(shù)字染色高達7色;

                                                              167nmXY軸超高分辨率;

                                                              ﹡實時監(jiān)測細胞特性可達數(shù)周;

                                                              ﹡整合3通道熒光,可與7個數(shù)字染色無縫疊加;

                                                              ﹡全自動載臺,兼容96孔板實時活細胞監(jiān)測;

                                                               

                                                              來源:普瑞麥迪(北京)實驗室技術有限公司
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