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細(xì)胞遷移與侵襲全攻略

瀏覽次數(shù):5215 發(fā)布日期:2019-7-3  來(lái)源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

 當(dāng)需要進(jìn)行細(xì)胞共培養(yǎng)、細(xì)胞趨化、細(xì)胞遷移以及細(xì)胞侵襲等研究的時(shí)候,需要在培養(yǎng)板上放入小室。小室內(nèi)通稱上室,培養(yǎng)板內(nèi)則稱下室,小室的底部有通透性的膜,一般常用聚碳酸酯膜(PC);根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求選擇不同孔徑的聚碳酸酯膜, 并且經(jīng)過(guò)不同處理,就可以進(jìn)行上述的實(shí)驗(yàn)。因?yàn)榫厶妓狨ツぞ哂型ㄍ感裕聦优囵B(yǎng)液中的誘導(dǎo)性成分或是趨化因子,可以影響到上室內(nèi)的細(xì)胞功能,不同廠家對(duì)小室的命名也不同,如Transwell、Boyden chamber、Millicell或是Thincert。
小室操作處理的步驟
Step1.選擇水凝膠類型包被小室:
水凝膠主要分為兩種:動(dòng)物來(lái)源(如基質(zhì)膠、膠原蛋白膠、纖維蛋白膠)或是合成型水凝膠(如Vitrogel 3DTM)。以24孔板的小室為例,取70-100μl(體積量不需太多,剛好將聚碳酸酯膜浸濕即可)稀釋好的水凝膠,均勻涂抹在小室內(nèi)的膜進(jìn)行包被,37℃放置1-3 h左右(時(shí)間取決于選用的水凝膠類型)。
                                               ▲細(xì)胞遷移和侵襲實(shí)驗(yàn)圖示
Step2.制備細(xì)胞懸液:
將進(jìn)行實(shí)驗(yàn)的細(xì)胞消化下來(lái),終止消化后離心棄去培養(yǎng)液,用PBS洗1-2次,用不含血清培養(yǎng)基將細(xì)胞重懸,并進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù),調(diào)整細(xì)胞密度至5×104/ml -5×105/ml (根據(jù)實(shí)驗(yàn)決定細(xì)胞接種數(shù)量)。
Step3.接種細(xì)胞:
取100µl細(xì)胞懸液加入24孔板上層小室,24孔板下室一般加入600µl含20%FBS的培養(yǎng)基,避免下層培養(yǎng)液和小室間氣泡產(chǎn)生,氣泡會(huì)減弱下層培養(yǎng)液的趨化作用,如果不小心出現(xiàn)氣泡,需要將小室提起,將氣泡除去,再將小室放進(jìn)培養(yǎng)板。
Step4.培養(yǎng)時(shí)間:
培養(yǎng)時(shí)間由實(shí)驗(yàn)?zāi)康臎Q定,如細(xì)胞共培養(yǎng)、細(xì)胞趨化、細(xì)胞遷移以及細(xì)胞侵襲等多種方面的研究;細(xì)胞遷移與侵襲的能力,除了培養(yǎng)時(shí)間需要考慮外,也需考慮細(xì)胞的處理!
Step5.結(jié)果分析:
結(jié)束培養(yǎng),取出小室,移除孔中培養(yǎng)液,用無(wú)鈣鎂的PBS洗2-3次,使用甲醇固定15-30分鐘后,將小室適當(dāng)風(fēng)干。用預(yù)備好的0.1%-0.5%結(jié)晶紫染色,再用棉簽輕輕擦掉內(nèi)層未遷移細(xì)胞,用PBS洗3次。在200倍或400倍顯微鏡視野下,隨機(jī)選擇五個(gè)視野拍照觀察并計(jì)數(shù)穿過(guò)膜后的細(xì)胞。
▲統(tǒng)計(jì)穿膜后細(xì)胞數(shù)量圖示
Reference
Transwell® Invasion Assays. Methods Mol Biol. 2011; 769:97-110
 
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