1. cDNA產量的很低
可能的原因：
*RNA模板質量低
*對mRNA濃度估計過高
*反應體系中存在反轉錄酶抑制劑或反轉錄酶量不足
*同位素磷32過期
*反應體積過大，不應超過50μl

2. 擴增產物在電泳分析時沒有條帶或條帶很淺
*最常見的原因在于您的反應體系是PCR的反應體系而不是RT-PCR的反應體系
*與反應起始時RNA的總量及純度有關
*建議在試驗中加入對照RNA
*第一鏈的反應產物在進行PCR擴增時，在總的反應體系中的含量不要超過1/10
*建議用Oligo(dT)或隨機引物代替基因特異性引物（GSP）用于第一鏈合成。由于RNA模板存在二級結構，如環(huán)狀結果，有可能導致GSP無法與模板退火；或SSⅡ反轉錄酶無法從此引物進行有效延伸。
*目的mRNA中含有強的轉錄中止位點，可以試用以下方法解決：
a. 將第一鏈的反應溫度提高至50℃。
b. 使用隨機六聚體代替Oligo(dT)進行第一鏈反應。

3. 產生非特異性條帶
*用RT陰性對照檢測是否被基因組DNA污染。如果RT陰性對照的PCR結果也顯示同樣條帶，則需要用DNase I重新處理樣品。
*在PCR反應中，非特異的起始擴增將導致產生非特異性結果。在低于引物Tm 2至5℃的溫度下進行退火，降低鎂離子或是目的DNA的量將減少非特異性結果的產生。
*由于mRNA剪切方式的不同，根據(jù)選擇引物的不同將導致產生不同的RT-PCR結果。

4. 產生彌散（smear）條帶
*在PCR反應體系中第一鏈產物的含量過高
*減少引物的用量
*優(yōu)化PCR反應條件/減少PCR的循環(huán)次數(shù)
*在用DNase處理被DNA污染的RNA樣品時，其產生的寡核苷酸片段會產生非特異性擴增，一般會顯示為彌散背景。

5. 產生大分子量的彌散條帶
*大多數(shù)情況下是由于退火溫度過低而導致的非特異性的起始及延伸產生的
*對于長片段的PCR，建議將反應體系中cDNA的濃度稀釋至1:10（或1:100-1:200）

6. 在無反轉錄酶的情況下，對照RNA獲得擴增結果
*通常是由于對照RNA中含有痕量DNA而導致的。由于進行體外轉錄時不可能將所有的DNA模板消除。建議可將第一鏈cDNA稀釋1:10、1:100、1:1000倍以消除DNA污染所造成的影響。
*有可能是引物二聚體的條帶

7. 擴增產物滯留在加樣孔中
*有可能是由于模板量過高而導致PCR結果產生了高分子量的DNA膠狀物。建議將第一鏈結果至少稀釋100倍再進行二次擴增。
*另外，在二次PCR時使用的退火溫度如果比引物的Tm值低5℃，可以將退火溫度適當增高或進行熱啟動以提高特異性。

8. SSⅢ與SSⅡ有何不同？
*具有更高的熱穩(wěn)定性（達50℃）
*具有更長的半衰期（達220分鐘）
*對PCR無抑制
*干冰運輸
*Tdt活性更低
9. 為什么有人更喜歡用SSⅢ而不是ThermoScript？

ThermoScript如果保存不當會引起活性很快降低，SSⅢ則更穩(wěn)定。

10. 為什么使用基因特異性引物（GSP）？
GSP在擴增低豐度的轉錄本時是最好的。OligodT引物建議用于高質量RNA及全長轉錄本的逆轉錄；隨機引物用于mRNA片段的逆轉錄。

11. 什么情況下需要使用RNase H？
在第一輪PCR中RNA/DNA雜合體不能正常變性時

12. 根據(jù)不同的目的選擇不同的系統(tǒng)：
目的 建議
RT與PCR使用不同的引物
或需要靈活選擇PCR DNA聚合酶 兩步法RT-PCR系統(tǒng)
高靈敏度 一步法或兩步法RT-PCR系統(tǒng)
高特異性 含有適當?shù)腄NA聚合酶的兩步法RT-PCR系統(tǒng)
或具有高保真Platinum Taq酶的一步法RT-PCR系統(tǒng)
高保真度 含有Pfx Taq酶的兩步法RT-PCR系統(tǒng)
長的反轉錄結果 通常使用兩步法RT-PCR系統(tǒng)可達到最佳結果
含Elongase酶的一步法RT-PCR系統(tǒng)

二、Generacer
1. 如何針對Generacer試劑盒設計基因特異性引物（GSP）？
使用5’或3’RACE試劑都需要至少一條基因特異性引物，您在設計引物時需要注意以下幾點要求：
*50-70％的GC含量，以提高引物熔點（Tm）
*23-28個堿基長度，以提高引物特異性
*降低3’端GC含量，將引物非特異性結合的可能性降至最低

2. 為什么得不到RACE產物？
*加入Hela對照
*低質量的RNA模板
*逆轉錄失敗，SSII和SSIII非常適用于長模板cDNA的合成
*目的基因豐度太低，可以通過提高PCR的循環(huán)次數(shù)來解決，建議使用巢式PCR
*目的基因沒有表達，可以通過使用兩條GSPs來分析cDNA中是否含有目的基因
*目的基因太長而不適合進行反轉錄，建議使用GeneRacer試劑盒中的Oligo dT來得到全長cDNA，使用隨機引物或與模板的5’端盡可能近的GSP進行PCR。
*cDNA模板屬于困難模板，可以通過以下方法解決：優(yōu)化PCR反應參數(shù)及反應體系；降低退火溫度；使用5-10％的DMSO幫助通過高GC含量區(qū)；使用高保真度和高延伸能力的酶進行PCR反應。

3. RACE的PCR結果有雜帶
RACE PCR雜帶或非特異性PCR條帶可能是由于以下原因：
*GSP與其他cDNA的非特異性結合會導致在擴增目的產物時得到無關產物。
*GeneRacer引物和cDNA的非特異性結合會導致產生一端帶有GeneRacer引物序列的PCR產物。
*RNA降解。
*PCR管或試劑污染。
注意：雜帶一般是因為沒有優(yōu)化PCR條件，可以加入陰性對照來確定。

4. 得不到全長的5’RACE PCR產物
*CIP反應后的RNA降解產生了新的帶有5’磷酸的斷裂模板，可以同GeneRacer RNA Oligo連接。一定要小心操作，保證RNA無降解。
*CIP脫磷酸不完全，可以增加反應中CIP的量或減少RNA的量。
*PCR產生了雜帶，并不是真正的連接產物，可以使用上述建議優(yōu)化PCR。

二、Generacer
1. 如何針對Generacer試劑盒設計基因特異性引物（GSP）？
使用5’或3’RACE試劑都需要至少一條基因特異性引物，您在設計引物時需要注意以下幾點要求：
*50-70％的GC含量，以提高引物熔點（Tm）
*23-28個堿基長度，以提高引物特異性
*降低3’端GC含量，將引物非特異性結合的可能性降至最低

2. 為什么得不到RACE產物？
*加入Hela對照
*低質量的RNA模板
*逆轉錄失敗，SSII和SSIII非常適用于長模板cDNA的合成
*目的基因豐度太低，可以通過提高PCR的循環(huán)次數(shù)來解決，建議使用巢式PCR
*目的基因沒有表達，可以通過使用兩條GSPs來分析cDNA中是否含有目的基因
*目的基因太長而不適合進行反轉錄，建議使用GeneRacer試劑盒中的Oligo dT來得到全長cDNA，使用隨機引物或與模板的5’端盡可能近的GSP進行PCR。
*cDNA模板屬于困難模板，可以通過以下方法解決：優(yōu)化PCR反應參數(shù)及反應體系；降低退火溫度；使用5-10％的DMSO幫助通過高GC含量區(qū)；使用高保真度和高延伸能力的酶進行PCR反應。

3. RACE的PCR結果有雜帶
RACE PCR雜帶或非特異性PCR條帶可能是由于以下原因：
*GSP與其他cDNA的非特異性結合會導致在擴增目的產物時得到無關產物。
*GeneRacer引物和cDNA的非特異性結合會導致產生一端帶有GeneRacer引物序列的PCR產物。
*RNA降解。
*PCR管或試劑污染。
注意：雜帶一般是因為沒有優(yōu)化PCR條件，可以加入陰性對照來確定。

4. 得不到全長的5’RACE PCR產物
*CIP反應后的RNA降解產生了新的帶有5’磷酸的斷裂模板，可以同GeneRacer RNA Oligo連接。一定要小心操作，保證RNA無降解。
*CIP脫磷酸不完全，可以增加反應中CIP的量或減少RNA的量。
*PCR產生了雜帶，并不是真正的連接產物，可以使用上述建議優(yōu)化PCR。

三、PCR
在進行PCR時：
*請確保您沒有使用過量的起始DNA或者過高濃度的引物，也沒有加入過量的Mg++
*請確保您使用了恰當?shù)耐嘶饻囟?/span>
*請確保您沒有使用過量的DNA聚合酶

四、引物
1. 應該選擇哪種純化方法？
取決于實驗目的和引物的長度
2. 為什么我訂購了50nmol，但是收到卻只有40nmol？
50nmol是起始量
3. 怎樣制備100μM的儲液？
體積（μl）=質檢報告上的nmol數(shù)目×10
4. 怎樣設計引物？
*一般長度20-30bp；
*至少50%的GC含量；
*避免引物二聚體和二級結構；
*引物對的Tm值應該接近。
5. 引物序列有插入或缺失？
*使用上游和下游引物多測幾個克隆。
*請選擇正確的純化方法。
6. PCR無結果？
*請檢查引物設計是否正確；
*請檢測OD讀數(shù)是否正確；
*做一個陽性對照和一個陰性對照