纖維素酶(cellulase,CL)/羧甲基纖維素酶活性測定 試劑盒說明書
分光光度法 50 管/24 樣
正式測定前務(wù)必取 2-3 個預(yù)期差異較大的樣本做預(yù)測定測定意義:
CL(EC 3.2.1.4)存在于細菌、真菌和動物體內(nèi),能夠催化纖維素降解,是一類可廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥、食品、棉紡、環(huán)保及可再生資源利用等領(lǐng)域的酶制劑。
測定原理:
采用蒽酮比色法測定CL催化羧甲基纖維素鈉降解產(chǎn)生的還原糖的含量。
需自備的儀器和用品:
可見分光光度計、水浴鍋、可調(diào)式移液器、1mL 玻璃比色皿、研缽、冰、濃硫酸和蒸餾水。
試劑的組成和配制:
提取液:液體 50mL×1 瓶,4℃保存; 試劑一:液體 6mL×1 瓶,4℃保存; 試劑二:液體 40mL×1 瓶,4℃保存;
試劑三:粉劑×1 瓶,4℃保存; 臨用前加入 5mL 蒸餾水和 45mL 濃硫酸充分溶解待用。
樣品測定的準備:
1、細菌或培養(yǎng)細胞:先收集細菌或細胞到離心管內(nèi),離心后棄上清;按照細菌或細胞數(shù)量
(104 個):提取液體積(mL)為 500~1000:1 的比例(建議 500 萬細菌或細胞加入 1mL 提取液),超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率 20%或 200W,超聲 3s,間隔 10s,重復(fù) 30 次); 8000g 4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。
2、組織:按照組織質(zhì)量(g):提取液體積(mL)為 1:5~10 的比例(建議稱取約 0.1g 組織,加入 1mL 提取液),進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。
3、血清(漿)樣品:直接檢測。
測定步驟:
1、 分光光度計預(yù)熱 30min 以上,調(diào)節(jié)波長至 620nm,蒸餾水調(diào)零。
2、加樣表(在 EP 管中依次加入下列試劑):
試劑名稱 |
對照管 |
測定管 |
樣本 |
100 |
100 |
試劑一(μL ) |
|
180 |
試劑二(μL ) |
740 |
740 |
蒸餾水(μL ) |
360 |
180 |
37℃振蕩反應(yīng) 1h 后,90℃水浴 15min(蓋緊,防止水分散失),冷卻后
8000g 25℃離心 10min,取上清,得糖化液
糖化液 (μL) |
350 |
350 |
試劑三 (μL) |
650 |
650 |
混勻, 90℃水浴 10min(蓋緊,防止水分散失),冷卻,620nm 處蒸餾水調(diào)零,測定吸光值
A,計算 ΔA=A 測定管-A 對照管。每個測定管設(shè)一個對照管。
CL 活力計算:
1、標準條件下測定的回歸方程為 y = 5.018x - 0.0462;x 為標準品濃度(mg/mL),y 為吸光值。
2、血清(漿)CL 活力的計算
單位的定義:每 mL 血清(漿)每分鐘催化產(chǎn)生 1μg 葡萄糖定義為一個酶活力單位。
CL 活力(μg /min/mL)= [1000×(ΔA+0.0462) ÷5.018×V 反總]÷V 樣÷T =39.8×(ΔA+0.0462)
3、細胞、細菌和組織中 CL 活力的計算
(1) 按照蛋白濃度計算
單位的定義:每 mg 組織蛋白每分鐘催化產(chǎn)生 1μg 葡萄糖定義為一個酶活力單位。
CL 活力(μg /min/mg prot)=[1000×(ΔA+0.0462) ÷5.018×V 反總]÷(V 樣×Cpr) ÷T
=39.8×(ΔA+0.0462) ÷Cpr
(2) 按樣本鮮重計算
單位的定義:每 g 組織每分鐘催化產(chǎn)生 1μg 葡萄糖定義為一個酶活力單位。
CL 活力(μg /min /g 鮮重)=[1000×(ΔA+0.0462) ÷5.018×V 反總]÷(W× V 樣÷V 樣總) ÷T
=39.8×(ΔA+0.0462) ÷W
(3) 按細菌或細胞密度計算
單位的定義:每 1 萬個細菌或細胞每分鐘催化產(chǎn)生 1μg 葡萄糖定義為一個酶活力單位。
CL 活力(μg /min /104 cell)=[1000×(ΔA+0.0462) ÷5.018×V 反總]÷(500×V 樣÷V 樣總) ÷T
=0.0796×(ΔA+0.0462)
1000:1mg/mL=1000ug/mL;V 反總:反應(yīng)體系總體積,1.2mL; V 樣:加入樣本體積,0.1
mL;V 樣總:加入提取液體積,1 mL;T:反應(yīng)時間,60 min;Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL;
W:樣本質(zhì)量,g;500:細菌或細胞總數(shù),500 萬。