題目:CRISPR-Based Chromatin Remodeling of the Endogenous Oct4 or Sox2 Locus Enables
Reprogramming to Pluripotency
期刊:Cell stem cell
影響因子:23.394
主要技術:CRISPR-dCas9-VP64激活系統(tǒng)、誘導性多能干細胞構建、原代細胞制作、iPS鑒定
研究背景
終末分化的成體細胞逆分化,形成多能干細胞狀態(tài)的過程稱為細胞重編程(Cell reprogramming)。在2006年,日本科學家山中伸彌(Shinya Yamanaka)發(fā)表誘導性多能干細胞(iPS, induced pluripotent stem cells)構建技術,利用逆轉錄病毒,把OSKM(OCT4, SOX2,KLF4 and C-myc)四因子在體細胞中進行超表達,成功把小鼠胚胎成纖維細胞誘導形成多能干細胞,開辟了一個全新的干細胞研究領域。隨著研究的深入,人皮膚成纖維細胞、T淋巴細胞等也被成功誘導成多能干細胞。而這些多能干細胞與供體DNA是保持一致的,且有分化成多種細胞的潛力,展現(xiàn)出非常廣闊的臨床應用前景。如把人血液中的T淋巴細胞逆分化形成多能干細胞后,當定向分化技術成熟時, iPS能被有序分化成需要的細胞,比如心肌細胞、神經細胞等。
染色體上重要的基因啟動子位點的表觀遺傳學變化,如DNA甲基化水平變化、組蛋白乙酰化水平變化、染色質重塑等,開啟重要基因如OCT4, SOX2等的內源性表達,是iPS誘導過程中至關重要的事件,直接關系到誘導是否成功。
CRISPR-Cas9系統(tǒng)作為一種強大的基因編輯工具,現(xiàn)今已廣泛用于常規(guī)的細胞或者個體的基因敲除、基因敲入、點突變外。當CAS9蛋白進行失活改造以及結構域添加后,得到CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng),則能實現(xiàn)特異基因轉錄激活。CRISPR-dCas9內源基因激活技術(SunTag Gene Activation),正好與iPS誘導技術完美契合,解決了激活內源OSKM四基因的問題,從而誕生了新型的iPS構建策略(見圖1)。
圖1. 利用CRIPR-dCas9基因激活系統(tǒng)的iPS誘導策略
研究內容及結果
1. 設計定位于Sox2和Oct4基因啟動子區(qū)和Oct4增強子區(qū)的sgRNA,利用CRISPR-dCas9-SunTag-VP64對Sox2和Oct4進行激活。
本研究首先設計了相應基因靶標的SgRNA,啟動子區(qū)或者增強子區(qū)靶標位置考慮因素包括:sgRNA靶標位置與重要的轉錄因子(OCT4、SOX2、NANOG)結合位點、組蛋白乙酰轉移酶p300結合位點的距離,靶標區(qū)附近組蛋白乙;植、DNA甲基化分布等。并以MEF細胞為材料,在RNA水平檢測了不同sgRNA對靶標基因sox2和oct4的激活效果(圖2)。
圖 2. MEF細胞中,Sox2和Oct4基因啟動子區(qū)和Oct4增強子區(qū)不同sgRNA的轉錄激活效果驗證實驗
2. CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)對重要基因進行內源激活,能成功獲得iPS。
隨后,同樣使用此方法,利用篩選出來18個有效sgRNA,分別激活7個重要基因: Oct4, Sox2, Klf4, c-Myc, Nr5a2, Glis 1, Cebpa。將MEF利用病毒感染方法進行18 sgRNA導入后,與dCas9-SunTag-VP64形成復合體,激活了OG2-MEF中相應內源基因的表達,經過17天的誘導后,成功得到了iPS細胞,并穩(wěn)定傳代,且顯示出與胚胎干細胞相同的克隆形態(tài)。通過免疫熒光和QPCR,顯示得到的iPS表達Nanog, Sox2和SSEA-1,相關干細胞基因表達水平與RI胚胎干細胞相比,均相當或者超過。此部分證明CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)進行內源激活時,能成功實現(xiàn)iPS誘導(圖3)。
圖3. CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)同時激活Oct4, Sox2, Klf4, c-Myc, Nr5a2, Glis 1, Cebpa內源表達時,能成功實現(xiàn)iPS誘導
3. CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)單獨對Sox2基因進行內源激活,也能有效獲得iPS
研究者單獨選取了能對Sox2進行激活的SgRNA進行iPS誘導,發(fā)現(xiàn)在有效激活內源Sox2基因表達的情況下,能成功得到誘導性多能干細胞,并能穩(wěn)定增殖傳代。得到iPS通過體內體外實驗,如干細胞基因表達情況檢測實驗(免疫熒光、qPCR等)、囊胚注射實驗等,在囊胚注射實驗后,還得到了嵌合體小鼠,并能穩(wěn)定地生殖傳遞,后代中得到OG2小鼠品系的小鼠。這些實驗證明了iPS細胞系的完整干性:穩(wěn)定自我更新能力和多向分化能力(圖4)。
圖4. CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)單獨激活Sox2內源表達時,能成功實現(xiàn)iPS誘導
4. CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)同時對Oct4基因啟動子區(qū)和增強子區(qū)進行內源激活,能有效獲得iPS
接下來,研究者選取靶標位置為Oct4啟動子區(qū)或者增強子區(qū)的sgRNA進行誘導實驗,發(fā)現(xiàn)單獨利用Oct4啟動子區(qū)的sgRNA或者增強子區(qū)sgRNA對Oct4基因進行激活時,雖然表達激活,但內源強度無法得與胚胎干細胞系R1相比。在誘導過程中,單獨的sgRNA無法得到iPS。Oct4啟動子區(qū)的sgRNA或者增強子區(qū)sgRNA進行組合時,內源Oct4表達強度得到了很好的提升,最終得到iPS,并能穩(wěn)定增殖傳代。得到iPS通過體內體外實驗,如干細胞基因表達情況檢測實驗(免疫熒光、qPCR等)、囊胚注射實驗等,在囊胚注射實驗后,還得到了嵌合體小鼠,并能穩(wěn)定地生殖傳遞,后代中得到OG2小鼠品系的小鼠。這些實驗證明了iPS細胞系的完整干性:穩(wěn)定自我更新能力和多向分化能力(圖5)。
圖 5. CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)同時對Oct4基因啟動子區(qū)和增強子區(qū)進行內源激活能有效獲得iPS
文章小結
作為利用CRISPR-dCas9激活系統(tǒng)進行iPS構建,作者非常有力地證明了CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)對構建iPS的有效性。可以預見,后續(xù)的MEF直接誘導形成心肌細胞、神經細胞的研究中,此系統(tǒng)很可能也有一席之地。此文章既進行了相關技術方法探索,也回答了一個非常好的科學問題:iPS誘導過程中,相關內源基因的表觀遺傳學變化直觀重要。
在表觀遺傳學研究中,CRIPSR-dCas9激活內源基因表達的應用,會相對廣泛一些。CRISPR-dCas9-SunTag-VP64系統(tǒng)稍加改進,很可能是直接改變相關基因表觀遺傳學特征的利器。
解析文獻
P. Liu, M. Chen, Y. Liu, L.S. Qi, S. Ding. CRISPR-Based Chromatin Remodeling of the Endogenous Oct4 or Sox2 Locus Enables Reprogramming to Pluripotency, Cell stem cell, 22 (2018) 252-261.
參考文獻
1. Black, J. B., Adler, A. F., et al. (2016) Targeted Epigenetic Remodeling of Endogenous Loci by CRISPR/Cas9-Based Transcriptional Activators Directly Converts Fibroblasts to Neuronal Cells. Cell stem cell 19, 406-414
2Chakraborty, S., Ji, H., Kabadi, A. M., et al. (2014) A CRISPR/Cas9-based system for reprogramming cell lineage specification. Stem cell reports 3, 940-947
3. Chavez, A., Scheiman, J., et al. (2015) Highly efficient Cas9-mediated transcriptional programming. Nature methods 12, 326-328
4. Thakore, P. I., D'Ippolito, A. M., et al. (2015) Highly specific epigenome editing by CRISPR-Cas9 repressors for silencing of distal regulatory elements. Nature methods 12, 1143-1149
5. Buganim, Y., Faddah, D. A., et al. (2012) Single-cell expression analyses during cellular reprogramming reveal an early stochastic and a late hierarchic phase. Cell 150, 1209-1222
6.Takahashi, K., and Yamanaka, S. (2006) Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell 126, 663-676