作者:張坤博士 徠卡顯微系統(tǒng) 生命科學(xué)部 應(yīng)用專員
熒光顯微鏡在研究活細(xì)胞中蛋白質(zhì)分子的定位、相互作用及動(dòng)力學(xué)等生命活動(dòng)中起著不可或缺的作用。將熒光蛋白如綠色熒光蛋白和目的蛋白融合表達(dá),然后利用熒光蛋白發(fā)出的特異性熒光來觀察和追蹤目的蛋白分子在科學(xué)研究中得到了廣泛的應(yīng)用。但是熒光蛋白具有量子產(chǎn)量低、成熟速度受限、光譜容易受到環(huán)境因素影響及容易形成聚集體等缺點(diǎn),這些在一些特殊的顯微熒光成像中會(huì)造成假象而影響最終的實(shí)驗(yàn)結(jié)果。因此,科學(xué)家們也開始尋找、發(fā)明越來越合適的活細(xì)胞標(biāo)記方法,以配合越來越精準(zhǔn)的顯微成像(如超高分辨率等)技術(shù)來更加真實(shí)的觀察、記錄各種微觀生命活動(dòng)。本文中重點(diǎn)介紹了SNAP-tag和SiR等新型標(biāo)記方法和染料的特征及應(yīng)用。
SNAP-tag技術(shù)簡介
圖1. SNAP-tag標(biāo)記示意圖。該標(biāo)記方法具有特異性高、速度快、穩(wěn)定性高及熒光探針選擇靈活多樣等優(yōu)點(diǎn)
如何才能將活細(xì)胞中的目的蛋白標(biāo)記上特異的熒光信號(hào)呢?談到特異性,科學(xué)家們首先考慮到的是酶和底物的相互作用。因此,從酶促反應(yīng)出發(fā),瑞士洛桑理工學(xué)院的Kai Johnsson科研小組發(fā)現(xiàn)人類DNA修復(fù)酶(alkylguanine-DNAalkyltransferase,AGT)可以特異性并快速地與苯甲基鳥嘌呤(benzylguanine, BG)衍生物發(fā)生反應(yīng),以共價(jià)鍵結(jié)合。隨后,對(duì)AGT進(jìn)行了突變改造,獲得了一種不與DNA鏈上的鳥嘌呤進(jìn)行反應(yīng)的蛋白Snap-tag,該蛋白不再定位于細(xì)胞核中,但與小分子BG衍生物的親和力卻大大地提高現(xiàn)在[1-2]。SNAP-tag只有20KDa大小,因此可以將目的蛋白與SNAP-tag融合表達(dá)。將帶有熒光探針標(biāo)記的BG導(dǎo)入細(xì)胞后,BG與SNAP-tag會(huì)快速的發(fā)生共價(jià)反應(yīng),從而實(shí)現(xiàn)活細(xì)胞中特異性目的蛋白的熒光標(biāo)記(圖1)?茖W(xué)家可以特異性的選擇細(xì)胞膜通透性的或非通透性的BG底物,分別用于研究膜表面分子和細(xì)胞質(zhì)內(nèi)表達(dá)的分子[3]。相對(duì)于熒光蛋白表達(dá),SNAP-tag標(biāo)記的最大的優(yōu)點(diǎn)是熒光探針的靈活選擇性,如熒光染料、量子點(diǎn)、金顆粒及光激活、光轉(zhuǎn)換的染料等,目前NEB等公司已經(jīng)將SNAP-tag的表達(dá)載體和這些底物廣泛商品化,熒光探針的光譜選擇也非常靈活(表1)。鑒于其使用的便捷性,SNAP-tag已經(jīng)得到了廣泛應(yīng)用,如用于研究蛋白的半衰期、運(yùn)輸及相互作用等[4-6]。Johnsson研究小組通過對(duì)SNAP-tag進(jìn)行改造,獲得了一種新的CLIP-tag,經(jīng)過基因改造,使其不與芐基鳥嘌呤衍生物結(jié)合,而與芐基胞嘧啶衍生物(Benzylcytosine, BC)結(jié)合[7]。CLIP-tag與SNAP-tag聯(lián)合使用,能夠同時(shí)標(biāo)記同一個(gè)細(xì)胞中兩個(gè)不同的蛋白,使這種tag自我標(biāo)記型的標(biāo)記方法的應(yīng)用得到了進(jìn)一步的拓展[8-11](表1)。在實(shí)際操作中,研究者將熒光標(biāo)記的底物加入表達(dá)SNAP-tag或CLIP-tag的細(xì)胞中,待結(jié)合完成后清洗幾次以去除未結(jié)合的熒光底物即可進(jìn)行成像,非常簡單便捷。
表1.目前NEB公司提供的多種多樣的SNAP-tag和CLIP-tag底物
SNAP-tag技術(shù)在STED超高分辨率顯微成像中的應(yīng)用
近十年中,顯微成像技術(shù)得到了飛躍的發(fā)展,填補(bǔ)光學(xué)顯微鏡(~200 nm)到電子顯微鏡(~0.1 nm)分辨率缺口,打破光學(xué)衍射極限的超高分辨率顯微鏡也越來越趨于成熟化。其中,德國馬普研究所的Stefan Hell教授憑借其研發(fā)的受激發(fā)射損耗(Stimulatedemission depletion,STED)技術(shù)榮獲2014年的諾貝爾化學(xué)獎(jiǎng)。STED超高分辨率顯微鏡是架構(gòu)在共聚焦顯微鏡上,因此其成像速度非?欤梢詮V泛的應(yīng)用于活細(xì)胞的超高分辨率成像。除了傳統(tǒng)的YFP等熒光蛋白可以用于STED活細(xì)胞超高分辨率成像,SNAP-tag和CLIP-tag可以非常簡便的的將AlexaFluo等有機(jī)染料引入活細(xì)胞,實(shí)現(xiàn)活細(xì)胞中多色超高分辨率成像。有機(jī)染料具有更好的光穩(wěn)定性,光譜的選擇也更加靈活,配合SNAP-tag和CLIP-tag標(biāo)記的特異性和穩(wěn)定性,可以更優(yōu)秀的服務(wù)于長時(shí)間的活細(xì)胞超高分辨率顯微成像。Joerg B等科學(xué)家用SNAP-tag/BG-94和CLIP-tag/BC-647分別標(biāo)記了表皮生長因子受體(EGFR)和表皮生長因子(EGF)(圖2),利用STED超高分辨率顯微鏡解析了兩者在活細(xì)胞中的相互作用(圖3)[12]。
圖2.SNAP-tag/BG-494和CLIP-tag/BC-647N分別標(biāo)記EGFR和EGF的示意圖。原則上EGFR和EGF結(jié)合后會(huì)形成同源二聚體,在這里考慮到示意圖的簡潔清晰性,EGFR仍然以單體的形式表示。
參考文獻(xiàn):
1.Juillerat, A., Gronemeyer, T., Keppler,A., Gendreizig, S., Pick, H., Vogel, H., and Johnsson, K. (2003). Directedevolution of O6-alkylguanine-DNA alkyltransferase for efficient labeling offusion proteins with small molecules in vivo. Chem Biol 10, 313-317.
2.Gronemeyer, T., Chidley, C., Juillerat,A., Heinis, C., and Johnsson, K. (2006). Directed evolution ofO6-alkylguanine-DNA alkyltransferase for applications in protein labeling.Protein Eng Des Sel 19, 309-316.
3.Brun, M.A., Griss, R., Reymond, L.,Tan, K.T., Piguet, J., Peters, R.J., Vogel, H., and Johnsson, K. (2011).Semisynthesis of fluorescent metabolite sensors on cell surfaces. J Am Chem Soc133, 16235-16242.
4.Banala, S., Maurel, D., Manley, S., andJohnsson, K. (2012). A caged, localizable rhodamine derivative forsuperresolution microscopy. ACS Chem Biol 7,289-293.
5.Campos, C., Kamiya, M., Banala, S.,Johnsson, K., and Gonzalez-Gaitan, M. (2011). Labelling cell structures andtracking cell lineage in zebrafish using SNAP-tag. Dev Dyn 240, 820-827.
6.Bannwarth, M., Correa, I.R., Sztretye,M., Pouvreau, S., Fellay, C., Aebischer, A., Royer, L., Rois, E., and Johnsson,K. (2009). Indo-1 derivatives for local calcium sensing. ACS Chem Biol 4, 179-190.
7.Gautier, A., Juillerat, A., Heinis, C.,Correa, I.R., Jr., Kindermann, M., Beaufils, F., and Johnsson, K. (2008). Anengineered protein tag for multiprotein labeling in living cells. Chem Biol 15, 128-136.
8.Maurel, D., Comps-Agrar, L., Brock, C.,Rives, M.L., Bourrier, E., Ayoub, M.A., Bazin, H., Tinel, N., Durroux, T.,Prezeau, L., et al. (2008). Cell-surface protein-protein interaction analysiswith time-resolved FRET and snap-tag technologies: application to GPCRoligomerization. Nat Methods 5,561-567.
9.Comps-Agrar, L., Maurel, D., Rondard, P.,Pin, J.P., Trinquet, E., and Prezeau, L. (2011). Cell-surface protein-proteininteraction analysis with time-resolved FRET and snap-tag technologies:application to G protein-coupled receptor oligomerization. Methods Mol Biol 756, 201-214.
10.Feinstein, T.N. (2013). Cell-surfaceprotein-protein interaction analysis with time-resolved FRET and snap-tagtechnologies. Methods Mol Biol 1066,121-129.
11.Lukinavicius, G., Lavogina, D., Orpinell,M., Umezawa, K., Reymond, L., Garin, N., Gonczy, P., and Johnsson, K. (2013).Selective chemical crosslinking reveals a Cep57-Cep63-Cep152 centrosomalcomplex. Curr Biol 23, 265-270.
12.Pellett, P.A., Sun, X., Gould, T.J.,Rothman, J.E., Xu, M.Q., Correa, I.R., Jr., and Bewersdorf, J. (2011).Two-color STED microscopy in living cells. Biomed Opt Express 2, 2364-2371.
關(guān)注徠卡顯微官方微信: