問題 |
可能原因 |
解決方法 |
無產(chǎn)物或產(chǎn)量低 |
模板濃度偏低或偏高 |
電泳檢測模板濃度,調(diào)整模板用量 |
模板降解 |
重新制備;基因組DNA、cDNA應(yīng)小量分裝后低溫保存 | |
模板中含有抑制反應(yīng)的雜質(zhì) |
純化模板 | |
引物濃度不足 |
調(diào)整引物濃度,特別是針對長片段PCR | |
引物存在二級結(jié)構(gòu) |
重新設(shè)計引物,避免二級結(jié)構(gòu);優(yōu)化退火溫度 | |
引物降解 |
引物應(yīng)高濃度小量分裝,-20℃保存,避免反復(fù)凍融 | |
Mg2+濃度偏低 |
適當(dāng)提高Mg2+濃度,從1 mM到3 mM以0.5 mM間隔遞增,針對不同模板和引物摸索最佳Mg2+濃度 | |
dNTP降解 |
-20℃保存,小量分裝,避免反復(fù)凍融 | |
酶純度低,擴增效率差 |
選用高質(zhì)量DNA聚合酶 | |
酶量不足 |
適當(dāng)增加酶量 | |
用酶不當(dāng) |
針對模板、目標(biāo)片段的特選擇適當(dāng)?shù)拿?詳見PCR產(chǎn)品選擇指南) | |
緩沖液失效 |
更換緩沖液或使用預(yù)混PCR反應(yīng)體系 | |
模板變性不充分 |
適當(dāng)延長變性時間;對高GC或復(fù)雜結(jié)構(gòu)模板,提高起始變性溫度至98℃ | |
退火溫度偏高 |
降低退火溫度,應(yīng)比引物Tm低至少5℃ | |
延伸時間不足 |
增加延伸時間,特別是針對長片段PCR | |
循環(huán)數(shù)目不夠 |
增加循環(huán)數(shù) | |
PCR管污染 |
質(zhì)量可靠的PCR管通常不需滅菌,否則應(yīng)先高溫高壓滅菌處理;用過的PCR管不可清洗后重復(fù)使用 | |
PCR儀故障 |
檢查程序和模塊溫度 | |
其他 |
使用PCR增強劑 | |
非特異產(chǎn)物過多 |
體系污染 |
設(shè)計對照實驗尋找污染源,操作時應(yīng)注意避免交叉污染 |
引物濃度過高 |
適當(dāng)減少引物濃度 | |
引物序列特異性差 |
重新設(shè)計引物 | |
Mg2+濃度過高 |
降低Mg2+濃度,從1 mM到3 mM以0.5 mM間隔遞增,針對不同模板和引物摸索最佳Mg2+濃度 | |
dNTP濃度過高 |
降低dNTP濃度 | |
酶量過多 |
減少酶量,以0.5 U間隔遞減 | |
退火溫度過低 |
提高退火溫度 | |
延伸時間過短 |
增加延伸時間,以1 min間隔遞增 | |
循環(huán)次數(shù)過多 |
減少循環(huán)次數(shù) | |
模板結(jié)構(gòu)過于復(fù)雜或目標(biāo)片段過長 |
特選擇適當(dāng)?shù)拿?詳見PCR產(chǎn)品選擇指南);使用PCR增強劑 | |
其他 |
HotStart PCR
TouchDown PCR
巢式PCR | |
引物二聚體 |
引物3’末端存在互補序列 |
重新設(shè)計引物 |
引物濃度過高 |
降低引物濃度 | |
模板濃度過低 |
提高模板濃度 | |
退火溫度不合適 |
優(yōu)化退火溫度 | |
循環(huán)次數(shù)過多 |
減少循環(huán)次數(shù) | |
其他 |
HotStart PCR | |
拖尾嚴重 |
引物濃度過高 |
調(diào)整引物濃度 |
引物序列特異性差或模板上存在同源序列 |
重新設(shè)計引物 | |
模板降解 |
重新制備模板 | |
模板濃度過高 |
降低模板濃度 | |
dNTP濃度過高 |
減少dNTP用量 | |
Mg2+濃度過高 |
降低Mg2+濃度,從1 mM到3 mM以0.5 mM間隔遞增,針對不同模板和引物摸索最佳Mg2+濃度 | |
酶量過多或質(zhì)量差 |
減少酶量,以0.5 U間隔遞減;更換質(zhì)量可靠的酶 | |
變性溫度過低 |
提高變性溫度,以0.5℃遞增 | |
退火溫度過低 |
提高退火溫度 | |
延伸時間過長 |
縮短延伸時間 | |
循環(huán)次數(shù)過多 |
減少循環(huán)次數(shù),以2個循環(huán)間隔遞減 | |
體系污染 |
設(shè)計對照實驗,消除污染源 | |
其他 |
HotStart PCR
TouchDown PCR
巢式PCR | |
假陽性 |
目標(biāo)片段與非特異擴增片段間存在同源性 |
設(shè)計陰性對照,確認為引物問題后重新設(shè)計引物 |
體系污染 |
設(shè)計陰性對照判斷是否有污染,去除污染源 |