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用于PCR的植物基因組DNA快速制備方法

瀏覽次數(shù):6719 發(fā)布日期:2010-12-22  來(lái)源:方統(tǒng)科技

一種用于PCR的植物基因組DNA快速制備方法
來(lái)源:方統(tǒng)科技
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摘要: 本文介紹了一種用于PCR的植物基因組DNA的快速制備方法。該方法只需將少量(4~6mg)植物葉片、適量(200μl) TE緩沖液、和一粒鎢合金珠放入離心管,在組織細(xì)胞研磨器中振動(dòng)5min破碎組織后,直接取1μl DNA溶液作為PCR的模板。本方法具有簡(jiǎn)單快速、成本低、擴(kuò)增效果好等優(yōu)點(diǎn),特別適合于大量樣品的基因型檢測(cè)。 

王蘭1, 2   龍?jiān)沏?SUP>2  劉耀光2
1 華南農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院,廣東省植物分子育種重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室
2 華南農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,廣東省教育廳植物功能基因組與生物技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室

摘要:本文介紹了一種用于PCR的植物基因組DNA的快速制備方法。該方法只需將少量(4~6mg)植物葉片、適量(200μl) TE緩沖液、和一粒鎢合金珠放入離心管,在組織細(xì)胞研磨器中振動(dòng)5min破碎組織后,直接取1μl DNA溶液作為PCR的模板。本方法具有簡(jiǎn)單快速、成本低、擴(kuò)增效果好等優(yōu)點(diǎn),特別適合于大量樣品的基因型檢測(cè)。

關(guān)鍵詞: 水稻,DNA制備,PCR

隨著生物技術(shù)的迅速發(fā)展,PCR技術(shù)已廣泛應(yīng)用于遺傳育種的各個(gè)領(lǐng)域,如種子純度鑒定、親緣關(guān)系的分析、分子標(biāo)記輔助育種、基因定位以及轉(zhuǎn)基因植株檢測(cè)等。在大規(guī)模的基于PCR的基因型檢測(cè)作業(yè)中,高效快速的模板DNA制備顯得非常重要。自Marmur 1961年建立用十二烷基磺酸鈉(SDS)和氯仿從生物細(xì)胞中分離提取DNA樣品的經(jīng)典方法以來(lái),人們一直致力于對(duì)DNA抽提方法的探討,并先后報(bào)道了一些關(guān)于DNA抽提的方法(Dellaporta et al., 1983; 宣樸等,1998;汪秀峰等,2002;周淑芬等,2004)。但這些方法仍然煩瑣費(fèi)時(shí)。本研究對(duì)作為PCR模板的植物基因組DNA制備方法作了簡(jiǎn)化,只需將少量葉片、適量TE緩沖液、和一粒鎢合金珠放入離心管,在組織細(xì)胞研磨器中振蕩約5min破碎組織后,直接取1μl DNA溶液作為PCR的模板。本方法具有簡(jiǎn)單快速、成本低、擴(kuò)增效果好等優(yōu)點(diǎn),特別適合于大規(guī)模的基因型檢測(cè)。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料
試驗(yàn)材料為粳稻品種臺(tái)中65(T65)及其雜種不育基因Sc的近等基因系E5,以及它們雜交組合構(gòu)建的F2群體,以及擬南芥(Arabidopsis thaliana)生態(tài)型Columbia。

1.2 基因組DNA制備方法
剪取(或用手摘。┧久缁虺芍耆~片(剪成約3~5mm小段)或擬南芥葉片約4~6mg,12~15mg,或25~30mg,放入2ml離心管中(注:2ml離心管的底部較寬,利于鎢合金珠的振蕩),加入200μl TE (10mmol/L Tris, pH8.0; 0.5mmol/L EDTA, pH8.0. 注:本TE中的EDTA濃度是常規(guī)TE的1/2)或200μl去離子水,放入一粒3mm直徑的鎢合金珠(Qiagen, Cat.69997),在多功能組織細(xì)胞研磨器(方統(tǒng)生物科技有限公司,型號(hào)MTM-60)上振動(dòng)約5min,把葉片打碎。取17μl溶液以瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)模板DNA質(zhì)量,取1μl溶液用于PCR擴(kuò)增。

1.3 PCR引物反應(yīng)
根據(jù)公共數(shù)據(jù)庫(kù)的水稻和擬南芥基因組序列設(shè)計(jì)PCR引物(表1),由英俊公司合成。Taq酶從杰順公司購(gòu)買。

表1  PCR引物序列

 引物  引物序列
 PR1 5’-TCTGTACAAGTTGAGGAATCTCCG-3’
  5’-TGCCACCCACAGCAAGCCTTATGA-3’
 PR2 5’-ACCCCATGGCGACGAATTCC-3’
  5’-CAGATTAAGGCAGGAAGTCC-3’
 PA 5’-GAAACTGATCAGTTGCTTTCAC-3’
  5’-CTGCTACACAATCTCGTTATGGAG-3’
 L14-121 5’-CTTGACAATTGCAAGGCCAA-3’
  5’-GAGGTAGGCATGAGACATGC-3’
 J04-91 5’-GTGCGGATCGATCGGCAGCA-3’
  5’-GCTCAGATCCGGCCAGATTC-3’
 P24-83 5’-CAGAACAGCATTCAGGCATC-3’
  5’-ATCCTGATAATGTGTGGCGC-3’
 P24-93 5’-CATTGGTTAAAGGATGGTAC-3’
  5’-TAGTACTGCTAGGACCATCC-3’
注:PA為擬南芥引物,其余為水稻引物,其中L14-121~P24-93為插入/缺失(InDel)標(biāo)記引物。

每個(gè)PCR反應(yīng)液(20μl)組成為:1× Buffer,0.2mmole/L dNTPs, 1U Taq酶,250nmole/L每種引物,1μl上述DNA溶液。PCR反應(yīng)在My Cycler (BioRad)熱循環(huán)儀上進(jìn)行。用引物反應(yīng)程序?yàn)?4℃預(yù)變性3min,擴(kuò)增35個(gè)循環(huán),每個(gè)循環(huán)94℃ 20s, 55~58℃ 30s,72℃ 60s (InDel標(biāo)記的PCR用30s);最后72℃ 2min。

1.4 聚丙烯酰胺凝膠電泳及檢測(cè) 

1.4.1 聚丙烯酰胺凝膠的制備
配制6%的聚丙烯酰胺凝膠100ml工作液:分別加5.7 g丙烯酰胺 (Acri),0.3g N,N-亞甲基雙丙烯酰胺(Bis-Acri),12g尿素,10ml 10×TBE,最后加水至100ml。灌膠前,每10ml膠液加入80μl 10%過(guò)硫酸銨,4μl四甲基乙二胺(TEMED),搖勻后迅速灌膠,膠凝固后即可點(diǎn)樣電泳,并通過(guò)銀染檢測(cè)實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

1.4.2 銀染 
先用0.1% AgNO3染色液染色10~15min,再用顯影液(100mL中含NaOH 0.5g、四硼酸鈉0.019g, 0.4mL甲醛)顯色,等條帶清晰后,直接用自來(lái)水沖洗終止顯色反應(yīng),用凝膠成像儀(BioRad)或數(shù)碼相機(jī)拍照并記錄實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

2 結(jié)果與討論

2.1 PCR模板DNA的快速制備
本方法是將少量植物葉片在TE溶液或去離子水中,經(jīng)鎢合金珠在離心管內(nèi)的振蕩破碎,直接獲得DNA溶液。用多功能組織細(xì)胞研磨器(MTM-60)一次可操作60個(gè)樣品。瓊脂糖凝膠電泳表明,用TE和去離子水都可獲得分子量較大的DNA片段(圖1A)。用TE制備的DNA在4℃下可保存10天以上,在冷凍下可保存半年。而用去離子水制備的DNA容易降解,保存時(shí)間較短,因此我們采用TE為主。

圖1 本方法制備的水稻和擬南芥基因組DNA。

注:A: 用TE(泳道1~5)和去離子水(泳道6~10)制備的水稻基因組DNA (4~6mg葉片/200μl)。 M為分子量標(biāo)記。B, C: 用200μl TE制備的不同濃度的水稻(B)和擬南芥(C)基因組DNA。泳道1~3為4~6mg葉片;4~6為12~15mg葉片;7~9為約25~30mg葉片。

2.2 不同量的模板DNA的PCR擴(kuò)增效果
本方法制備的基因組DNA沒(méi)有經(jīng)過(guò)純化,含有各種可能抑制Taq酶活性的雜質(zhì)。因此,加入過(guò)多的粗制DNA可能會(huì)影響PCR反應(yīng)。為了找出適合于PCR反應(yīng)的DNA量,我們?cè)谝欢康腡E(200μl)中加入不同量(4~6mg、12~15mg和25~30mg)的水稻和擬南芥葉片制備基因組DNA(圖1,B, C)。選用2對(duì)水稻的引物(PR1、PR2,擴(kuò)增產(chǎn)物長(zhǎng)度分別為540bp和890bp)和1對(duì)擬南芥引物(PA, 擴(kuò)增產(chǎn)物長(zhǎng)度為1 kb),取1μl DNA在20μl的體系進(jìn)行PCR反應(yīng)。結(jié)果表明,對(duì)擴(kuò)增較小的DNA片段,所有模板都能擴(kuò)增出產(chǎn)物,但用4~6mg葉片制備的模板DNA獲得最好的擴(kuò)增效果(圖2A)。對(duì)擴(kuò)增較大的DNA片段,只有用4~6mg葉片制備的模板DNA獲得較穩(wěn)定的擴(kuò)增效果(圖2B, C)。

圖2 不同量的基因組DNA為模板的PCR反應(yīng)的瓊脂糖凝膠(1%)檢測(cè)

注:A,B,C分別為用引物PR1,PR2,和PA進(jìn)行PCR。在所有反應(yīng)(20μl)含有1U Taq酶和1μl基因組DNA;泳道1~3,4~6,7~9分別為以4~6mg,12~15mg,和25~30mg葉片在200μl TE中制備的基因組DNA。

本實(shí)驗(yàn)說(shuō)明,用4~6mg(可以多至約10mg)葉片/200μl TE的比例制備基因組DNA溶液所含的雜質(zhì)濃度較低,加入1μlDNA溶液到20μl反應(yīng)體系中不會(huì)抑制Taq酶的活性。而加入1μl較高濃度的模板DNA對(duì)PCR反應(yīng)的抑制作用較大。由于模板DNA量較少(約1~2ng/μl),PCR循環(huán)數(shù)比用較大量的純化DNA模板(一般用20~50ng)的PCR要多些(多3~5個(gè)循環(huán))。雖然可以將用較多葉片制備的模板DNA稀釋使用或加入較少量(<1μl)的模板DNA也能獲得好的PCR效果,但從簡(jiǎn)化操作步驟,提高工作效率考慮,確定最佳的經(jīng)驗(yàn)值對(duì)效率化的大規(guī)模樣品檢測(cè)尤為重要。由于加入的樣品葉片量有一個(gè)合適的范圍,在實(shí)際操作中,并不需要所有樣品都用天平稱取,以經(jīng)驗(yàn)?zāi)繙y(cè)估算即可。

2.3用于分子標(biāo)記的基因型分析
由于用本方法制備的基因組DNA可以PCR擴(kuò)增出較大的目的片段,對(duì)于PCR分子標(biāo)記,如微衛(wèi)星(SSR)、插入/缺失(InDel)、單核苷酸多態(tài)(SNP)等檢測(cè)較短的DNA片段(一般<200bp)應(yīng)該是可行的。我們用4對(duì)位于水稻秈粳雜種花粉不育基因Sc(Yang et al., 2008)連鎖區(qū)的InDel標(biāo)記引物(表1)對(duì)F2群體進(jìn)行的基因型分析。圖3顯示了部分結(jié)果,所有標(biāo)記的PCR擴(kuò)增效果穩(wěn)定,聚丙烯酰胺凝膠電泳的DNA條帶均清晰易辨。

圖3  用InDel分子標(biāo)記的水稻基因型檢測(cè)

注:A~D分別為用引物L(fēng)14-121,J04-91,P24-83,和P24-93的PCR。左邊起第1和第2泳道分別為親本E5和T65、其它泳道均為F2個(gè)體。

已報(bào)道植物基因組DNA制備的方法很多,如經(jīng)典的SDS法、CTAB法,另外還有一些簡(jiǎn)化的制備方法,如SDS一步法(王會(huì)文等,2002)、微波爐水煮法(黃小樂(lè)等,2002)、TE研磨法(羅文永等,2002)、NaOH處理幼葉直接作為PCR模板法(汪秀峰等,2002)、簡(jiǎn)易提取法(陳文岳等,2005)、剪切法(趙紅霞等,2006)。對(duì)需要對(duì)大量樣品進(jìn)行基因型分析的研究來(lái)說(shuō),這些方法的操作效率不夠高,或制備的模板DNA的擴(kuò)增結(jié)果不理想,常常不能擴(kuò)增出目的片段。本研究提出的DNA制備方法簡(jiǎn)單,大大縮短了時(shí)間,適合操作大量的樣品,而且PCR效果和重復(fù)性好,需要葉片量也很少,所需的儀器(多功能組織細(xì)胞研磨器)價(jià)格低,因此實(shí)驗(yàn)成本低。我們用本方法已制備了數(shù)萬(wàn)的水稻樣品用于各種分子標(biāo)記(SSR、InDel、SNP)和轉(zhuǎn)基因的基因型檢測(cè)。

來(lái)源:廣州市方統(tǒng)生物科技有限公司
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標(biāo)簽: 植物基因 PCR 制備
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