1.轉(zhuǎn)基因技術(shù)的發(fā)展
自從人類學會蓄養(yǎng)動物、耕作植物以來,我們的祖先就從未停止過對物種的遺傳改良。過去的幾千年里改良物種的主要方式:針對自然環(huán)境造成的突變或無意的人為因素所產(chǎn)生的優(yōu)良基因和重組個體進行選育和利用,從而通過隨機和自然的積累優(yōu)化基因。然而這種極低幾率且無人類控制性的被動模式大大阻礙了農(nóng)業(yè)的發(fā)展,迫切地需要一門新興科學。自遺傳學創(chuàng)立后改觀了這一境遇,動植物育種采用人工雜交的方法進行優(yōu)良基因的重組和外源基因的導入,從而實現(xiàn)遺傳改良。
因此,轉(zhuǎn)基因技術(shù)與傳統(tǒng)技術(shù)在本質(zhì)上都是通過獲得優(yōu)良基因進行遺傳改良。但在基因轉(zhuǎn)移的范圍和效率上,轉(zhuǎn)基因技術(shù)與傳統(tǒng)育種技術(shù)區(qū)別于兩點:首先,傳統(tǒng)技術(shù)一般只能在生物種內(nèi)個體間實現(xiàn)基因的轉(zhuǎn)移,而轉(zhuǎn)基因技術(shù)所轉(zhuǎn)移的基因則不受生物體間親緣關(guān)系的限制;第二,傳統(tǒng)的雜交和選擇技術(shù)一般是在生物個體水平上進行,操作對象是整個基因組,所轉(zhuǎn)移的是大量的基因,不可能準確地定位于某個基因進行操作和選擇,對后代的表型預(yù)見性較差。而轉(zhuǎn)基因技術(shù)所操作和轉(zhuǎn)移的是經(jīng)過明確定義的基因,功能清楚,可準確預(yù)測后代。故轉(zhuǎn)基因技術(shù)是對傳統(tǒng)技術(shù)的發(fā)展和補充,兩者的結(jié)合可以極大地提高動植物品種改良的效率。
在轉(zhuǎn)基因發(fā)展的過程中,從早期單純進行科研研究拓展到目前研究和應(yīng)用齊頭并進,生物學科與其他領(lǐng)域的交叉有著不可忽略的重要作用,如生物物理產(chǎn)生的顯微鏡技術(shù),以及日益發(fā)展的電穿孔技術(shù),極大地促進了科研走向應(yīng)用。
在當今轉(zhuǎn)基因領(lǐng)域中電穿孔技術(shù)的應(yīng)用范圍最廣,早在1982年Neumann.E將外源DNA在電場條件下導入小鼠真核細胞[1],從而實現(xiàn)了基因重組和外源基因的功能研究。隨之這一技術(shù)得到了廣泛的運用,如細菌、酵母、植物和動物細胞的體外應(yīng)用如Simon, J. R[2];以及器官植入、皮膚損傷修復的電化學療法、疫苗的注射等體內(nèi)體外臨床應(yīng)用,如S.Tollefsen, et al[3];小分子或大分子物質(zhì)功能性研究;研制轉(zhuǎn)基因動物、轉(zhuǎn)基因植物新品種等,本文下文就將特別介紹轉(zhuǎn)基因動植物的應(yīng)用。
電穿孔技術(shù)主要包括電轉(zhuǎn)染和電融合:電轉(zhuǎn)染是利用脈沖電場將外源DNA導入細胞中,當細胞處于高壓電場時,瞬時電脈沖可將細胞膜穿孔產(chǎn)生可逆性孔徑,從而DNA進入細胞與染色體整合;電融合是利用高強度的電場脈沖,引起相鄰的細胞融合。
電穿孔技術(shù)的簡單原理與應(yīng)用如下圖。
圖1:電穿孔前(左)后(右)細胞質(zhì)膜的變化示意圖
圖2:電穿孔原理和應(yīng)用示意圖
2.轉(zhuǎn)基因動物
1981年,第一次成功地將外源基因?qū)雱游锱咛,?chuàng)立了轉(zhuǎn)基因動物技術(shù)。1982年獲得轉(zhuǎn)基因小鼠,轉(zhuǎn)入大鼠的生長激素基因,使小鼠體重為正常個體的二倍,因而被稱為“超級小鼠”,這些開拓了轉(zhuǎn)基因克隆動物–無性生殖技術(shù)。1997年英國I. Wilmut等,用綿羊乳腺細胞的細胞核移植到去細胞核的卵細胞中,成功得到了克隆羊“多莉”,證實了高等哺乳動物也可以突破有性生殖繁殖后代。
核顯微注射法則是動物轉(zhuǎn)基因技術(shù)中早期最常用的方法。它是在顯微鏡下將外源基因注射到受精卵細胞的原核內(nèi),注射的外源基因與胚胎基因組融合,然后進行體外培養(yǎng),最后移植到受體母畜子宮內(nèi)發(fā)育,這樣分娩的動物體內(nèi)的每一個細胞都含有新的DNA片段。然而這種方法的缺點是效率較低、位置效應(yīng)(外源基因插入位點隨機性)造成的表達結(jié)果的不確定性、動物利用率低等,在反芻動物還存在著繁殖周期長,有較強的時間限制、需要大量的供體和受體動物等特點。
體細胞核移植是近些年來新出現(xiàn)的一種轉(zhuǎn)基因技術(shù)。該方法是先把外源基因與供體細胞在培養(yǎng)基中培養(yǎng),使外源基因整合到供體細胞上,然后將供體細胞細胞核移植到受體細胞——去核卵母細胞,構(gòu)成重建胚,再把其移植到假孕母體,待其妊娠、分娩,便可得到轉(zhuǎn)基因的克隆動物。在這一技術(shù)中,外源基因的穩(wěn)定表達和重建胚的良好發(fā)育是關(guān)鍵因素,則選擇合適的基因轉(zhuǎn)染方式和細胞融合方式就顯得尤為重要。
與傳統(tǒng)的方法相比,電穿孔具有很多優(yōu)點。首先,不必像顯微注射那樣使用玻璃針,不需要技術(shù)培訓和昂貴的設(shè)備,可以一次對成百萬的細胞進行注射。第二,與用化學物質(zhì)相比,電穿孔幾乎沒有生物或化學副作用。第三,因為電穿孔是一種物理方法,較少依賴細胞類型,因而應(yīng)用廣泛。實際上,對大多數(shù)細胞類型,用電穿孔法基因的轉(zhuǎn)移效率比化學方法高得多。已有多篇科研文獻證實了電穿孔技術(shù)在轉(zhuǎn)基因研究和臨床研究上的作用,如Diego Laderach, et al[4]使用BTX ECM830以方波波形電擊DC細胞,轉(zhuǎn)染siRNA研究體內(nèi)定位基因的功能,類似這種用以研究某基因的方法已相當成熟;以及Annelies E.P, et al[5]運用BTX ECM2001交流電排列細胞和直流電進行電擊達到了目的基因的穩(wěn)定表達和胚胎細胞的良好融合,最終得到轉(zhuǎn)基因牛,等等。而BTX ECM2001細胞電融合&電穿孔儀已被美國權(quán)威實驗室冷泉港列入標準實驗操作程序。
轉(zhuǎn)基因動物可以建立多種疾病的動物模型,進而研究這些疾病的發(fā)病機理及治療方法,而電穿孔技術(shù)的應(yīng)用可以針對性地制備抗性藥物;以及通過與化學學科的交叉,利用電化學療法注射抗癌藥以治療皮膚型腫瘤疾病。轉(zhuǎn)基因動物技術(shù)配合電穿孔技術(shù)還可以改造動物的基因組,使家畜、家禽的經(jīng)濟性狀改良更加有效,如使生長速度加快、瘦肉率提高,肉質(zhì)改善,飼料利用率提高,抗病力增強等。對于動物遺傳資源保護的意義更加深遠,對挽救瀕危物種是必不可少的。
3.轉(zhuǎn)基因植物
近些年來,面對全球環(huán)境劇變所引發(fā)的諸多農(nóng)業(yè)問題,如耕地面積減少、空氣質(zhì)量下降等造成早期改良品種的方法已不合時宜,迫使轉(zhuǎn)基因技術(shù)充分考慮各種因素,以達到人口不斷增加對植物包括糧食及其他食品的需求;蚬こ虘(yīng)用技術(shù)之一的基因重組,可用于不同生物遺傳物質(zhì)進行體外人工剪切、組合、拼接,使遺傳物質(zhì)重新組合,然后,通過載體,如微生物、病毒等轉(zhuǎn)入微生物或細胞內(nèi),進行"無性繁殖",并使所需基因在細胞內(nèi)表達出來,產(chǎn)生人類所需的物質(zhì)或創(chuàng)造新的物種。
近年來,國外已出現(xiàn)了一些"轉(zhuǎn)基因作物",如抗腐爛西紅柿、抗除草劑棉花、抗病毒黃瓜和馬鈴薯,以及抗蟲玉米等。這些都是運用轉(zhuǎn)基因技術(shù)將目標基因轉(zhuǎn)入受體植物體內(nèi),可用電轉(zhuǎn)染方法、基因槍或者是傳統(tǒng)的農(nóng)桿菌侵染等;驑尫椒ǖ男瘦^高但是價格昂貴;傳統(tǒng)的農(nóng)桿菌侵染易污染且效率低,外界不確定因素較多;相比較,大多數(shù)研究使用電轉(zhuǎn)染方法獲得轉(zhuǎn)基因植物,如在James Saunders等利用BTX630電轉(zhuǎn)儀得到轉(zhuǎn)基因大豆[6]。
轉(zhuǎn)基因植物可通過原生質(zhì)體融合獲得,有可能改變植物的某些遺傳特性,不僅可以改良作物特性,還可培育高產(chǎn)、優(yōu)質(zhì)、抗病毒、抗蟲、抗寒、抗旱、抗?jié)、抗鹽堿、抗除草劑等的作物新品種。而且可用轉(zhuǎn)基因植物或離體培養(yǎng)的細胞,來生產(chǎn)外源基因的表達產(chǎn)物,如人的生長素、胰島素、干擾素、白介素2、表皮生長因子、乙型肝炎疫苗等已在轉(zhuǎn)基因植物中得到表達。
結(jié)束語:
轉(zhuǎn)基因技術(shù)的不斷發(fā)展極大地促進了轉(zhuǎn)基因領(lǐng)域的理論研究和實際應(yīng)用,特別是極大推動了轉(zhuǎn)基因動植物新品種的培育。而我國已啟動了“轉(zhuǎn)基因生物新品種培育”科技重大專項,隨著這些科研成果轉(zhuǎn)化為生產(chǎn)力,必將大大促進中國社會經(jīng)濟的發(fā)展。
參考文獻:
【1】Neumann, E., Schaefer-Ridder, et al. Gene transfer into mouse lyoma cells by electroporation in high electric fields. EMBO J,1982;1:841–845.
【2】Simon, J. R. Transformation of intact yeast cells by electroporation. Methods Enzymol,1993;217: 478–483.
【3】S.Tollefsen, et al.DNA injection in combination with electroporation: a novel method for vaccination of farmed ruminants. Scandinavian journal of immunology,2002;57:229-238.
【4】Diego Laderach, et al.RNA Interference Shows Critical Requirement for NF-kβ p50 in the production of IL-12 by Human Dendritic cells.The Journal of Immunolgy,2003;1750-1757.
【5】Annelies E.P,et al.Nuclear Transfer and Electrofusion in Bovine In Vitro-Matured/In Vitro-Fertilized Embryos: Effect of Media and Electrical Fusion Parameters.Molecular Reproduction,1993;36:307-312.
【6】James Saunders,et al.Rapid optimization of Electroporation Conditions for Plant Cells,Protoplasts and Pollen.Molecular Biotechnology,1995;3:181-190.
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