亞細胞構(gòu)造的離心分離典型實驗
一)簡介:
用簡易的差分離心結(jié)合各種型式的密度梯度離心可以分離和純化各種亞細胞器。研究者也可以根據(jù)自己的設(shè)備情況對實驗參數(shù)做一定的改動,也可以更多地利用速率-區(qū)帶密度梯度離心或等密度離心來簡化實驗過程和提高分離純度。
二)實驗:
。﹦驖{制備:
鼠肝12克加入0.25M蔗糖與5mM Tris-HCL(PH7.4)共45ml用“概論”中建議的勻漿設(shè)備與方法制備成勻漿待用。
ⅱ)實驗流程:
鼠肝勻漿的部分分離程序
該實驗流程中
沉Ⅰ:細胞核、質(zhì)膜大片段、重線粒體,少量未破碎細胞及極少量沉Ⅱ→沉Ⅳ的成分。
沉Ⅱ:重線粒體、質(zhì)膜片段,及少量沉Ⅲ→沉Ⅳ成分。
沉Ⅲ:線粒體、溶酶體,高爾基膜,部分粗內(nèi)質(zhì)網(wǎng)及極少量沉Ⅱ→沉Ⅳ成分。
沉Ⅳ:所有的細胞質(zhì)可溶部分。
離心Ⅰ:低速冷凍離心機,50ml管。離Ⅱ,離Ⅲ為高速冷凍離心機8x50ml角轉(zhuǎn)頭。
離Ⅳ為超速機或高速機8x50ml角轉(zhuǎn)頭或8x12ml角轉(zhuǎn)頭
ⅱ)從沉Ⅱ中純化線粒體:
勻漿保持在200ml甘露醇,50ml蔗糖,1mM EDTA,10mM Hepes-NaOH(ph7.4)中,全部操作均應(yīng)使勻漿在冰浴中,產(chǎn)生沉Ⅱ后去除上清表面以及離心管壁部的脂肪(這一點很重要)。
加20ml保持液到沉Ⅱ中稀釋到30ml,3000gx10分再次離心并重復(fù)以上過程二次以上,最后的沉淀保持在10ml保持液中。
ⅲ)從沉Ⅳ中部分純化光滑微粒體:
保持液為0.25M蔗糖,5mM Tris-Hcl(ph7.4)沉淀中光滑微粒體成松軟狀態(tài)位于緊密狀態(tài)的粗糙微粒體沉淀之上。
小心地倒掉上清Ⅳ后,在沉Ⅳ中加入2-3ml保持液,輕搖,大部分光滑微粒體(沉ⅣA)將分散到清液中,而沉Ⅳ(B)(粗糙微粒體,緊密沉淀)仍在沉降中,倒出沉沉Ⅳ(A),余下的沉Ⅳ(B)加入2-3ml保持液即完成。
ⅲ)從沉Ⅰ中部分純化質(zhì)膜:
保持液用 1mM NaHCO3
鼠肝加25ml保持液在研缽中錘擊15次,仍用1mM NaHCO3稀釋到100ml,攪拌2分鐘并用孔徑為75µm的尼龍布過濾。然后離心得到Ⅰ加5ml 1mM NaHCO3到沉Ⅰ中再放入勻漿器,慢速往復(fù)2-3次,再用1mM NaHCO3稀釋到15ml,用甩平轉(zhuǎn)頭10ml玻璃錐形管,1200g離心10分鐘,不用制動減速到停止,沉淀很明顯由三層組成。輕輕搖動或攪動即可使最上層的線粒體溶入上清液,中間層富含質(zhì)膜,最下層是細胞核。倒去上清加入5ml 1mM NaHCO3輕搖使中間層進入溶液,注意要盡可能少地擾動下層核沉淀。將再次倒出的上清液稀釋到15ml并重復(fù)以上離心過程即可進一步純化質(zhì)膜。
ⅳ)從上Ⅲ中分離粗糙和光滑微粒體:
從已經(jīng)去掉線粒體的上Ⅲ中可以比從沉Ⅳ中更有效地分離粗糙及光滑微粒體,配置溶液
0.6M 蔗糖,5mM Tris-HCL(PH8.0)
15mM CSCL,1.3M蔗糖,0.25M蔗糖
用角式轉(zhuǎn)頭,10-13ml厚壁PC(聚碳酸酯)離心管,先注入3ml1.3M蔗糖5mM Tris-HCL,再注入1.5ml0.6M蔗糖,5mM Tris-HCL從而形成了一個在離心管下部的階梯形密度梯度。在梯度上部注入上Ⅲ直至充滿離心管,100000gx90分鐘。離心后得到二個主要部分,在0.6M蔗糖界面處或稍下一點是光滑微粒體,沉淀是粗糙微粒體。
用針筒吸出光滑微粒體。沉淀用三倍容積的5mM Tris-HCL(PH8.0)稀釋后再次離心160000gx30分,得到粗糙微粒體沉淀,再用2-3ml的0.25M蔗糖與5mM Tris-HCL(PH8.0)稀釋即可。
ⅴ)從勻漿中純化細胞核:
配置溶液:0.25M蔗糖在TKM(0.05M Tris-HCL PH7.5)中及2.3M蔗糖在TKM中,25mM KCL 5mM MgCl2
將鼠肝放在研缽中加0.25M蔗糖-TKM,沖研10- 15次,用紗布過濾后加入二倍容積的2.3M蔗糖-TKM,這樣就使蔗糖的濃度為1.62M(該濃度最好用光折射儀檢測確認,5℃折射率1.4115,20℃時,1.4137)。
將此溶液9ml注入PC離心管,在溶液下部注入3-4ml2.3M蔗糖-TKM,130000gx30分,5℃,甩平轉(zhuǎn)頭。
離心后倒去上清液即為核沉淀。它可以根據(jù)研究者需要用合適的緩沖劑稀釋。
ⅵ)從沉Ⅰ中純化細胞核:
取沉Ⅰ,用旋渦混合器分散沉淀并加入等容積的60%(W/W)蔗糖-TKM,放入勻漿器上下抽動2-3次,繼續(xù)加入60%(W/W)蔗糖-TKM直至蔗糖濃度達到55%(W/W)。用折射儀檢測(5℃折射率1.4356,20℃時,1.4328)。取該溶液9ml移入14mlPC離心管,管下部鋪3-4ml60%(W/W)蔗糖液,在甩平轉(zhuǎn)頭中120000g 5℃離心30分鐘,倒去上清液。余下的核沉淀可用合適的緩沖液稀釋。為了消除沉淀中的膜,在制備勻漿時可用0.5% Triton x-100清洗。這種做法既消除了膜,又不影響核的結(jié)構(gòu)。
ⅶ)從沉Ⅰ中純化質(zhì)膜:
配置溶液:60%(W/W)蔗糖液,37.2%(W/W)蔗糖液均分別加在5mM Tris-HCL(PH8.0)中將已制備好的沉Ⅰ剩余的緩沖液一起用渦旋混合器混合后再加入60%(W/W)蔗糖使蔗糖終濃度為48%,并用折射儀檢測(5℃折射率1.4181,20℃時,1.4150)。取以上溶液6ml注入14mlPC離心管,上鋪6ml37.2%(W/W)蔗糖液以1ml PH7.4緩沖液。在甩平轉(zhuǎn)頭中160000g,5℃,離心3小時。
質(zhì)膜聚集在37.2%(W/W)蔗糖液的上部,用注射器吸出,并用三倍容積的5mM Tris-HCL
(PH8.0)稀釋后再在100000g,5℃,離心40分鐘,沉淀即為質(zhì)膜。
ⅷ)從沉Ⅰ中純化重線粒體:
配置溶液:0.25M蔗糖,10mM Hepes-NaOH(PH7.6),1mM EDTA,1mM MgCl2,2.4M蔗糖,將沉Ⅰ用0.25M蔗糖,10mM Hepes-NaOH(PH7.5),1mM MgCl2 稀釋到15ml。要盡可能避免動及沉淀最底部的紅色部分。將已稀釋部分倒出,混勻后加入23ml 2.4M蔗糖,10mM Hepes-NaOH(PH7.5),1mM MgCl2,所得到的最終蔗糖濃度為1.0 M。
用光折射儀測定(5℃折射率1.3827,20℃時,1.3812)如需要,進行調(diào)節(jié),將此液體倒入一個50mlPC管,上鋪8ml0.25M蔗糖,10mM Hepes-NaOH(PH7.5)在35000g,5℃離心10分鐘,倒去上清液并擦凈沾在離心管壁上的物質(zhì)。沉淀很清楚有二層,順離心管內(nèi)壁加入10ml 0.25M蔗糖,10mM Hepes-NaOH(PH7.5),1mM EDTA,輕輕晃動并稀釋沉淀的上部褐色重線粒體層。
對于其他組織材料的線粒體細化問題。請參照“Methods in Enzynology”第55卷。
ⅸ)從沉Ⅲ中純化溶酶體及粒體:
配置溶液:0.3M,1.1M,2.1M蔗糖的線性梯度可以用梯度形成儀做成,也可以用不連續(xù)梯度(1.1M,1.4M,1.7M,2.1M,每種2.5ml)在5℃靜置12-16小時也會形成連續(xù)的1.1M-2.1M近線性梯度。
在沉Ⅲ中加入10ml,0.3M蔗糖,輕搖,慢慢得可以看到離心管底部沉積了暗褐色的沉淀(溶酶體)倒去上清,加入4ml0.3M蔗糖液在勻漿器中磨勻(注意:活塞與器壁要松一些)。取2ml以上勻漿置于線性梯度(1.1M-2.1M蔗糖)之上,輕攪勻漿使其與梯度液之間的界面盡可能減少密度的不連續(xù),在甩平轉(zhuǎn)頭中95000g,5℃離心4小時。
離心后,溶酶體區(qū)帶形成于1.20-1.26g/cm3密度之間(在離心管下部),而線粒體則形成于1.17-1.21g/cm3密度之間(在離心管中部。溶酶體區(qū)帶中密度較高的部分相對較純。)
ⅹ)從沉Ⅱ及沉Ⅲ中純化高爾基膜:
配置梯度溶液:38.7%,36%,33%,29%(W/W)蔗糖液每種均加入5 mM Tris-HCL(PH8.0)
用上清Ⅰ離心,10000g,5℃ 20分鐘得到沉Ⅱ+沉Ⅲ
用5ml 0.25M蔗糖,5mM Tris-HCL(PH8.0)稀釋沉淀,恒溫攪拌并使溶液的蔗糖濃度上升到43.07%(W/W),用光折射儀檢測(5℃折射率1.1979,20℃時,1.1957)
在PC離心管中(13ml)由下往上依次鋪設(shè)如下層次:
3ml樣品(蔗糖濃度43%w/w),4ml 38.7%蔗糖液,2ml 36%蔗糖液,2ml 37%蔗糖液,2ml 29%蔗糖液,在甩平轉(zhuǎn)頭中100000g,5℃離心1小時,用注射器收集含有高爾基膜的上部二個區(qū)帶。
我們也可以用這個方法從全勻漿中來分離純化高爾基膜,勻漿中蔗糖濃度配到43.7%,然后用以上不連續(xù)梯度來分離純化,但是對于大容量勻漿,直接法是不合適的。
小結(jié):以上典型實驗以鼠肝勻漿為原料,以差分離心為主,輔以蔗糖的連續(xù)或不連續(xù)梯度分離各種亞細胞器,方法簡單易行,成本也較低。我們也可以用Ficoll,percoll,Metrizamid, Nycodenz,……等等梯度材料來分離純化亞細胞器。
作者:余興明 電話:13764301893,