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厭氧菌的分離、培養(yǎng)及鑒定

瀏覽次數(shù):6797 發(fā)布日期:2009-2-3  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負
一 摘要:
1.1 實驗內(nèi)容:
厭氧菌的分離、培養(yǎng)及鑒定;
1.2 目的:
1 掌握厭氧菌的分離、培養(yǎng)及活菌計數(shù)的一般方法。
了解厭氧菌菌鑒定的一般方法。
2 復(fù)習(xí)并鞏固平時所學(xué)的微生物知識與技能。
3 培養(yǎng)獨立思考、設(shè)計和動手實驗的能力。

二 介紹:
厭氧微生物在自然界分布廣泛,種類繁多,其生理作用日益受到人們的重視。
專性厭氧菌,對氧氣非常敏感,因此,他們的分離、培養(yǎng)及活菌計數(shù)的關(guān)鍵是提供無氧和低氧化還原電勢的培養(yǎng)環(huán)境。

厭氧菌的培養(yǎng):
在培養(yǎng)厭氧菌時,最需要控制的是厭氧條件,在pH=7.0,O2的濃度與1atm的氧平衡時,O2——O2-反應(yīng)的電位是0.81V,因此,在-0.33V時,O2濃度是大氣壓中O2濃度的10-75。每升飽和了空氣的水中含有1.48×10-55個O2。所以說,要保證厭氧菌培養(yǎng)時的低電位是很重要的。
厭氧菌的培養(yǎng)方法很多,如厭氧箱法、厭氧袋法、厭氧罐法。這些方法都需要特定的除氧措施,操作步驟多,較繁瑣。本實驗介紹的是一種簡便的試管培養(yǎng)法——亨蓋特厭氧滾管技術(shù),亨蓋特厭氧滾管技術(shù)是美國微生物學(xué)家亨蓋特于1950年首次提出并應(yīng)用于瘤胃厭氧微生物研究的一種厭氧培養(yǎng)技術(shù) 因此他是世界上第一個分離純化厭氧菌的人。
以后這項技術(shù)又經(jīng)歷了幾十年的不斷改進,從而使亨蓋特厭氧技術(shù)日趨完善,并逐漸發(fā)展成為研究厭氧微生物的一套完整技術(shù),而且多年來的實踐已經(jīng)證明它是研究嚴格、專性厭氧菌的一種極為有效的技術(shù)。該技術(shù)的優(yōu)點是:預(yù)還原培養(yǎng)基制好后,可隨時取用進行試驗;任何時間觀察或檢查試管內(nèi)的菌種都不會干擾厭氧條件。

三 實驗材料與設(shè)備:
3.1 分離與培養(yǎng):
3.1.1菌種:待測樣品;
3.1.2 培養(yǎng)基:改良的PRAS培養(yǎng)基(氮素自加)
[配方組成——NH4CL 1g,MgCl2 0.1g,K2HPO4 0.4g,KH2PO4 0.2g,甲酸鈉5g,乙酸鈉5g,甲醇3.5ml,Ph值為7.0,蒸餾水1000ml,1%的樹脂刃天青(還原指示劑)1ml,121攝氏度滅菌20min.使用前每5ml培養(yǎng)基加入1%Na2S(還原劑)和5%NaHCO3及3000u/ml青霉素液(抑制劑)各0.1ml]
3.1.3 試劑:冰塊 Na2S NaHCO3
3.1.4 器材:高純氮氣 厭氧管 厭氧手套箱 注射器 恒溫培養(yǎng)箱 銅柱除氧系統(tǒng) 定量加樣器 厭氧罐 超聲波破碎儀 酒精燈 冰塊 水浴鍋 記號筆 振蕩器 等
3.2 菌種的鑒定:
3.2.1 菌種:待測菌
3.2.2 培養(yǎng)基;糖發(fā)酵培養(yǎng)基、蛋白胨水培養(yǎng)基、淀粉培養(yǎng)基(液體);
3.2.3 試劑;乙醚 吲哚試劑 盧戈氏碘液;
3.2.4 器材:超凈工作臺 恒溫培養(yǎng)箱 高壓蒸汽滅菌鍋 接種環(huán) 移液管載玻片 顯微鏡 等

四、實驗方法與步驟:
4.1分離與培養(yǎng)
4.1.1 銅柱系統(tǒng)除氧
銅柱是一個內(nèi)部裝有銅絲或銅屑的硬質(zhì)玻璃管。此管的大小為40~400mm,兩端被加工成漏斗狀,外壁繞有加熱帶,并與變壓器相連來控制電壓和穩(wěn)定銅柱的溫度。銅柱兩端連接膠管,一端連接氣鋼瓶,另一端連接出氣管口。由于從氣鋼瓶出來的氣體如N2、CO2 和H2等都含有微量O2,故當這些氣體通過溫度約360℃的銅柱時,銅和氣體中的微量O2化合生成CuO,銅柱則由明亮的黃色變?yōu)楹谏。當向氧化狀的銅柱通入H2時,H2與CuO中的氧就結(jié)合形成H2O,而CuO又被還原成了銅,銅柱則又呈現(xiàn)明亮的黃色。此銅柱可以反復(fù)的使用,并不斷起到除氧的目的。當然H2源也可以由氫氣發(fā)生器產(chǎn)生。

4.1.2 預(yù)還原培養(yǎng)基及稀釋液的制備
在無氧無菌的超凈厭氧手套箱中的條件下,制作預(yù)還原培養(yǎng)基及稀釋液時,先將配置好的培養(yǎng)基和稀釋液煮沸驅(qū)氧,而后用半定量加樣器趁熱分裝到螺口厭氧試管中,一般瓊脂培養(yǎng)基裝4.5~5.0mL,稀釋液裝9mL,并插入通N2氣的長針頭以排除O2。此時可以清楚的看到培養(yǎng)基內(nèi)加入的氧化還原指示劑—刃天青由藍到紅最后變成無色,說明試管內(nèi)已成為無氧狀態(tài),然后蓋上螺口的丁烯膠塞及螺蓋,于滅氧罐中滅菌備用。

4.1.3 分離
(1)編號
取五支無菌水試管,分別用記號筆標明10-1、10-2……10-5。
(2)稀釋
在無氧無菌的超凈厭氧手套箱中的條件下,用無菌注射器吸取1mL混合均勻的液體樣品,加入裝有預(yù)還原生理鹽水的厭氧試管中,用震蕩器將其混合均勻,制成10-1稀釋液。用無菌注射器吸取1mL10-1稀釋液至另一裝有9mL生理鹽水的厭氧試管中,制成10-2稀釋液。依此進行10倍系列稀釋,至10-6,制成不同樣品稀釋液。通常選10-4、10-5、10-6三個稀釋度進行滾管計數(shù)。
(3)滾管分離
1)滾管
將無氧無菌的瓊脂培養(yǎng)基在沸水浴中溶化,置46-50℃恒溫的水浴中,待用,當培養(yǎng)基從瓶中取出時,要用N2在培養(yǎng)基內(nèi)中充氣。再在試管中用N2充氣,趕走所有管內(nèi)空氣,然后把培養(yǎng)基加入管內(nèi),立即塞上瓶塞。待瓶塞塞入管內(nèi),及時拔出充氣針頭。用無菌注射器吸取10-4、10-5、10-6三個稀釋度各0 .1mL,分別注入待用的試管中,然后將其平放于盛有冰水的瓷盤中迅速滾動,帶菌的溶化瓊脂在試管內(nèi)壁會即刻形成凝固層。
2)分離純化
生成的菌落需挑取出來,鏡檢其形態(tài)及純度。如尚未獲得純培養(yǎng)物,需再次稀釋滾管,并再次挑取菌落,直至獲得純培養(yǎng)物為止。待挑取的單菌落預(yù)先在放大鏡下觀察確定,做好標記。然后將培養(yǎng)基試管固定于適當?shù)闹Ъ苌,打開試管膠塞,同時迅速將氣流適當、火焰滅過菌的氮氣長針頭插入管內(nèi)。同時,另一液體厭氧管去掉膠塞插入另一滅過菌的通氣針頭。將準備好的彎頭毛細管小心插入固體培養(yǎng)基內(nèi),找準待挑菌落,輕輕吸取,轉(zhuǎn)移至液體試管內(nèi),加塞。37℃培養(yǎng),培養(yǎng)24h或更長時間或待培養(yǎng)液混濁后檢查已分離培養(yǎng)物的純度。
3)劃線分離
將試管橡皮塞的一端在火焰上灼燒一下,挨著打氣針塞住管口,在針頭快速取下前,通氣15-20s,管口一端在火焰上燒片刻。旋緊管塞,劃線后的卷管直立保溫,使用CO2:H2=80:20,因為CO2比空氣重,開啟后管塞不致有空氣殘留。劃線后的滾管,置34-37度下培養(yǎng),便可長出菌落。

4.1.4 鏡檢與計數(shù)
(1)鏡檢
挑取特征性菌落制片,革蘭氏染色后鏡檢,觀察菌體形態(tài)。
(2)計數(shù)
液體純培養(yǎng)物經(jīng)系列稀釋后,按上述滾管法培養(yǎng)。然后對固體滾管計數(shù),計算每克或每毫升樣品中含有厭氧菌數(shù)量cfu/g(mL)樣品=A×10ml×X/10×D
A-0.1mL滾管計數(shù)的實際平均值;
X- 鏡檢呈現(xiàn)為厭氧菌的數(shù)目;
X/10-菌落中厭氧菌的概率;
D- 稀釋倍數(shù)

4.2 菌種的鑒定
4.2.1糖發(fā)酵試驗
糖發(fā)酵實驗是最常用的生化反應(yīng),在腸道細菌鑒定上尤為重要。絕大多數(shù)細菌都能利用糖類作為碳源和能源,但是它們在分解糖的能力上有很大差異,有些細菌能分解糖并產(chǎn)酸(如乳酸、醋酸、丙酸等)和氣體(如氫、甲烷、二氧化碳等);有些細菌只產(chǎn)酸不產(chǎn)氣。例如大腸桿菌能分解乳糖和葡萄糖產(chǎn)酸并產(chǎn)氣;傷寒桿菌能分解葡萄糖產(chǎn)酸不產(chǎn)氣,不能分解乳糖;普通變形桿菌分解葡萄糖產(chǎn)酸產(chǎn)氣,不能分解乳糖。酸的產(chǎn)生可以利用指示劑來斷定。在配制培養(yǎng)基時預(yù)先加入溴甲酚紫[pH5.2(黃色)—6.8(紫色)],當發(fā)酵產(chǎn)酸時,可使培養(yǎng)基由紫色變?yōu)辄S色。氣體的產(chǎn)生可由發(fā)酵管中倒置的德漢氏小管中有無氣泡來證明。
具體實驗步驟:
① 將菌液進行適當稀釋,之后在無菌環(huán)境下,取一定量的稀釋液注入生化鑒定管中,用無菌封口膜封口。
② 將接種后的鑒定管放入?yún)捬豕拗校渥愕獨夂蠓湃?7℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)。
③ 24h后觀察各管中液體顏色變化及產(chǎn)氣情況。
4.2.2 蛋白質(zhì)分解實驗
① 將菌液進行適當稀釋,之后在無菌環(huán)境下,取一定量的稀釋液注入生化鑒定管中,用無菌封口膜封口。
② 將接種后的鑒定管放入?yún)捬豕拗校渥愕獨夂蠓湃?7℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)。
③24h后各管分別進行米倫氏反應(yīng)、吲哚反應(yīng)、黃色反應(yīng)和坂口反應(yīng)等。
4.2.3 淀粉水解實驗
① 將菌液進行適當稀釋,之后在無菌環(huán)境下,取一定量的稀釋液注入生化鑒定管中,用無菌封口膜封口。
② 將接種后的鑒定管放入?yún)捬豕拗校渥愕獨夂蠓湃?7℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)。
③ 24h后于各管中加入適量盧戈氏碘液觀察淀粉的水解情況。

五 注意事項及注釋:
1 注射器在使用前必須經(jīng)過121℃、20min滅菌。
2 注意無菌操作,保持手和培養(yǎng)管的清潔。每次接種前需用酒精棉球?qū)捬豕苌w子擦一遍。
3 用注射器吸取菌懸液注入固體培養(yǎng)基后,如需再次吸取,應(yīng)快速將注射器插入?yún)捬豕苤,以防止針頭污染。
4樹脂刃天青(resazurin)既是還原劑又是指示劑,它可以把培養(yǎng)基中殘留的溶解氧去除,其氧化還原電位指示敏感范圍為-42mV。有氧時呈紫色或粉紅色,無氧時呈無色(培養(yǎng)基的顏色),它是較為理想的氧化還原電位指示劑和培養(yǎng)嚴格厭氧菌不可缺少的。
5培養(yǎng)基中加入的青霉素是用來抑制其它細菌生長的,因為厭氧菌的細胞壁成分為假肽聚糖,不受青霉素影響。
6注射器在使用前必須先用培養(yǎng)基上面的氣體沖洗、填充,然后插入培養(yǎng)基的下層,以保證當培養(yǎng)基移入試管時,就處于無氧氣體層的下面。

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