(一)層析技術(shù)的原理 |
層析法是目前廣泛應(yīng)用的一種分離技術(shù)。本世紀(jì)初俄國(guó)植物學(xué)家M.Tswett發(fā)現(xiàn)并使用這一技術(shù)證明了植物的葉子中不僅有葉綠素還含有其它色素,F(xiàn)在層析法已成為生物化學(xué)、分子生物學(xué)及其它學(xué)科領(lǐng)域有效的分離分析工具之一。 層析法是利用不同物質(zhì)理化性質(zhì)的差異而建立起來的技術(shù)。所有的層析系統(tǒng)都由兩個(gè)相組成:一是固定相,它或者是固體物質(zhì)或者是固定于固體物質(zhì)上的成分;另一是流動(dòng)相,即可以流動(dòng)的物質(zhì),如水和各種溶媒。當(dāng)待分離的混合物隨溶媒(流動(dòng)相)通過固定相時(shí),由于各組份的理化性質(zhì)存在差異,與兩相發(fā)生相互作用(吸附、溶解、結(jié)合等)的能力不同,在兩相中的分配(含量對(duì)比)不同,而且隨溶媒向前移動(dòng),各組份不斷地在兩相中進(jìn)行再分配。與固定相相互作用力越弱的組份,隨流動(dòng)相移動(dòng)時(shí)受到的阻滯作用小,向前移動(dòng)的速度快。反之,與固定相相互作用越強(qiáng)的組份,向前移動(dòng)速度越慢。分部收集流出液,可得到樣品中所含的各單一組份,從而達(dá)到將各組份分離的目的。 |
(二)層析法分類見表16-5~7 |
(三)層析法的特點(diǎn)與應(yīng)用 |
層析法是根據(jù)物質(zhì)的理化性質(zhì)不同而建立的分離分析方法。根據(jù)層析峰的位置及峰高或峰面積,可以定性及定量。層析法與光學(xué)、電學(xué)或電化學(xué)儀器連用,可檢測(cè)出層析后各組份的濃度或質(zhì)量,同時(shí)繪出層析圖。層析儀與電子計(jì)算機(jī)聯(lián)用,可使操作及數(shù)據(jù)處理自動(dòng)化,大大縮短分析時(shí)間。由于層析法具有分辨率高、靈敏度高、選擇性好、速度快等特點(diǎn),因此適用于雜質(zhì)多、含量少的復(fù)雜樣品分析,尤其適用于生物樣品的分離分析。近年來,已成為生物化學(xué)及分子生物學(xué)常用的分析方法。在醫(yī)藥衛(wèi)生、環(huán)境化學(xué)、高分子材料、石油化工等方面也得到了廣泛的應(yīng)用。
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二、層析法實(shí)驗(yàn)技術(shù) |
(一)凝膠層析法 |
凝膠層析又稱分子篩過濾、排阻層析等。它的突出優(yōu)點(diǎn)是層析所用的凝膠屬于惰性載體,不帶電荷,吸附力弱,操作條件比較溫和,可在相當(dāng)廣的溫度范圍下進(jìn)行,不需要有機(jī)溶劑,并且對(duì)分離成分理化性質(zhì)的保持有獨(dú)到之處。對(duì)于高分子物質(zhì)有很好的分離效果。
⒈凝膠的選擇 根據(jù)實(shí)驗(yàn)?zāi)康牟煌x擇不同型號(hào)的凝膠。如果實(shí)驗(yàn)?zāi)康氖菍悠分械拇蠓肿游镔|(zhì)和小分子物質(zhì)分開,由于它們?cè)诜峙湎禂?shù)上有顯著差異,這種分離又稱組別分離,一般可選用Sephadex G-25和G-50,對(duì)于小肽和低分子量的物質(zhì)(1000-5000)的脫鹽可使用Sephadex G-10,G-15及Bio-Gel-p-2或4。如果實(shí)驗(yàn)?zāi)康氖菍悠分幸恍┓肿恿勘容^近似的物質(zhì)進(jìn)行分離,這種分離又叫分級(jí)分離。一般選用排阻限度略大于樣品中最高分子量物質(zhì)的凝膠,層析過程中這些物質(zhì)都能不同程度地深入到凝膠內(nèi)部,由于Kd不同,最后得到分離。 ⒉柱的直徑與長(zhǎng)度根據(jù)經(jīng)驗(yàn),組別分離時(shí),大多采用2-30cm長(zhǎng)的層析柱,分級(jí)分離時(shí),一般需要100cm左右長(zhǎng)的層析柱,其直徑在1-5cm范圍內(nèi),小于1cm產(chǎn)生管壁效應(yīng),大于5cm則稀釋現(xiàn)象嚴(yán)重。長(zhǎng)度L與直徑D的比值L/D一般宜在7-10之間,但對(duì)移動(dòng)慢的物質(zhì)宜在30-40之間。 ⒊凝膠柱的制備 凝膠型號(hào)選定后,將干膠顆粒懸浮于5-10倍量的蒸餾水或洗脫液中充分溶脹,溶脹之后將極細(xì)的小顆粒傾瀉出去。自然溶脹費(fèi)時(shí)較長(zhǎng),加熱可使溶脹加速,即在沸水浴中將濕凝膠漿逐漸升溫至近沸,1-2小時(shí)即可達(dá)到凝膠的充分脹溶。加熱法既可節(jié)省時(shí)間又可消毒。 凝膠的裝填:將層析柱與地面垂直固定在架子上,下端流出口用夾子夾緊,柱頂可安裝一個(gè)帶有攪拌裝置的較大容器,柱內(nèi)充滿洗脫液,將凝膠調(diào)成較稀薄的漿頭液盛于柱頂?shù)娜萜髦,然后在微微地(cái)嚢柘率鼓z下沉于柱內(nèi),這樣凝膠粒水平上升,直到所需高度為止,拆除柱頂裝置,用相應(yīng)的濾紙片輕輕蓋在凝膠床表面。稍放置一段時(shí)間,再開始流動(dòng)平衡,流速應(yīng)低于層析時(shí)所需的流速。在平衡過程中逐漸增加到層析的流速,千萬不能超過最終流速。平衡凝膠床過夜,使用前要檢查層析床是否均勻,有無“紋路”或氣泡,或加一些有色物質(zhì)來觀察色帶的移動(dòng),如帶狹窄、均勻平整說明層析柱的性能良好,色帶出現(xiàn)歪曲、散亂、變寬時(shí)必須重新裝柱。 ⒋加樣和洗脫 凝膠床經(jīng)過平衡后,在床頂部留下數(shù)亳升洗脫液使凝膠床飽和,再用滴管加入樣品。一般樣品體積不大于凝膠總床體積的5%-10%。樣品濃度與分配系數(shù)無關(guān),故樣品濃度可以提高,但分子量較大的物質(zhì),溶液的粘度將隨濃度增加而增大,使分子運(yùn)動(dòng)受限,故樣品與洗脫液的相對(duì)粘度不得超過1.5-2。樣品加入后打開流出口,使樣品滲入凝膠床內(nèi),當(dāng)樣品液面恰與凝膠床表面相平時(shí),再加入數(shù)毫升洗脫液中洗管壁,使其全部進(jìn)入凝膠床后,將層析床與洗脫液貯瓶及收集器相連,預(yù)先設(shè)計(jì)好流速,然后分部收集洗脫液,并對(duì)每一餾份做定性、定量測(cè)定。 ⒌凝膠柱的重復(fù)使用、凝膠回收與保存 一次裝柱后可以反復(fù)使用,不必特殊處理,并不影響分離效果。為了防止凝膠染菌,可在一次層析后加入0.02%的疊氮鈉,在下次層析前應(yīng)將抑菌劑除去,以免干擾洗脫液的測(cè)定。 如果不再使用可將其回收,一般方法是將凝膠用水沖洗干凈濾干,依次用70%、90%、95%乙醇脫水平衡至乙醇濃度達(dá)90%以上,濾干,再用乙醚洗去乙醇、濾干、干燥保存。濕態(tài)保存方法是凝膠漿中加入抑菌劑或水沖洗到中性,密封后高壓滅菌保存。 ⒍凝膠層析的應(yīng)用 ⑵用于分離提純:凝膠層析法已廣泛用于酶、蛋白質(zhì)、氨基酸、多糖、激素、生物堿等物質(zhì)的分離提純。凝膠對(duì)熱原有較強(qiáng)的吸附力,可用來去除無離子水中的致熱原制備注射用水。 ⑶測(cè)定高分子物質(zhì)的分子量:用一系列已知分子量的標(biāo)準(zhǔn)品放入同一凝膠柱內(nèi),在同一條件下層析,記錄每一分鐘成分的洗脫體積,并以洗脫體積對(duì)分子量的對(duì)數(shù)作圖,在一定分子量范圍內(nèi)可得一直線,即分子量的標(biāo)準(zhǔn)曲線。測(cè)定未知物質(zhì)的分子量時(shí),可將此樣品加在測(cè)定了標(biāo)準(zhǔn)曲線的凝膠柱內(nèi)洗腫后,根據(jù)物質(zhì)的洗脫體積,在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出它的分子量。 ⑷高分子溶液的濃縮:通常將SephadexG-25或50干膠投入到稀的高分子溶液中,這時(shí)水分和低分子量的物質(zhì)就會(huì)進(jìn)入凝膠粒子內(nèi)部的孔隙中,而高分子物質(zhì)則排阻在凝膠顆粒之外,再經(jīng)離心或過濾,將溶脹的凝膠分離出去,就得到了濃縮的高分子溶液。 |
(二)離子交換層析法 |
離子交換層析法是以具有離子交換性能的物質(zhì)作固定相,利用它與流動(dòng)相中的離子能進(jìn)行可逆的交換性質(zhì)來分離離子型化合物的一種方法。 ⒈離子交換劑預(yù)處理和裝柱 對(duì)于離子交換纖維素要用流水洗去少量碎的不易沉淀的顆粒,以保證有較好的均勻度,對(duì)于已溶脹好的產(chǎn)品則不必經(jīng)這一步驟。溶脹的交換劑使用前要用稀酸或稀堿處理,使之成為帶H+或OH-的交換劑型。陰離子交換劑常用“堿-酸-堿”處理,使最終轉(zhuǎn)為-OH-型或鹽型交換劑;對(duì)于陽離子交換劑則用“酸-堿-酸”處理,使最終轉(zhuǎn)為-H-型交換劑。洗滌好的纖維素使用前必須平衡至所需的pH和離子強(qiáng)度。已平衡的交換劑在裝柱前還要減壓除氣泡。為了避免顆粒大小不等的交換劑在自然沉降時(shí)分層,要適當(dāng)加壓裝柱,同時(shí)使柱床壓緊,減少死體積,有利于分辨率的提高。柱子裝好后再用起始緩沖液淋洗,直至達(dá)到充分平衡方可使用。 ⒉加樣與洗脫 加樣:層析所用的樣品應(yīng)與起始緩沖液有相同的pH和離子強(qiáng)度,所選定的pH值應(yīng)落在交換劑與被結(jié)合物有相反電荷的范圍,同時(shí)要注意離子強(qiáng)度應(yīng)低,可用透析、凝膠過濾或稀釋法達(dá)此目的。樣品中的不溶物應(yīng)在透析后或凝膠過濾前,以離心法除去。為了達(dá)到滿意的分離效果,上樣量要適當(dāng),不要超過柱的負(fù)荷能力。柱的負(fù)荷能力可用交換容量來推算,通常上樣量為交換劑交換總量的1%-5%。 洗脫:已結(jié)合樣品的離子交換前,可通過改變?nèi)芤旱膒H或改變離子強(qiáng)度的方法將結(jié)合物洗脫,也可同時(shí)改變pH與離子強(qiáng)度。為了使復(fù)雜的組份分離完全,往往需要逐步改變pH或離子強(qiáng)度,其中最簡(jiǎn)單的方法是階段洗脫法,即分次將不同pH與離子強(qiáng)度的溶液加入,使不同成分逐步洗脫。由于這種洗脫pH與離子強(qiáng)度的變化大,使許多洗脫體積相近的成分同時(shí)洗脫,純度較差,不適宜精細(xì)的分離。最好的洗脫方法是連續(xù)梯度洗脫,洗脫裝置見圖16-6。兩個(gè)容器放于同一水平上,第一個(gè)容器盛有一定pH的緩沖液,第二個(gè)容器含有高鹽濃度或不同pH的緩沖液,兩容器連通,第一個(gè)容器與柱相連,當(dāng)溶液由第一容器流入柱時(shí),第二容器中的溶液就會(huì)自動(dòng)來補(bǔ)充,經(jīng)攪拌與第一容器的溶液相混合,這樣流入柱中的緩沖液的洗脫能力即成梯度變化。第一容器中任何時(shí)間的濃度都可用下式進(jìn)行計(jì)算: C=C2-(C2-C1)(1-V)A2/A1 式中A1、A2分別代表兩容器的截面積:C1、C2分別表示容器中溶液的濃度;V為流出體積對(duì)總體積之比。當(dāng)A1=A2時(shí)為線性梯度,當(dāng)A1>A2時(shí)為凹形梯度,A1>A2時(shí)為凸形梯度。 洗脫時(shí)應(yīng)滿足以下要求:①洗脫液體積應(yīng)足夠大,一般要幾十倍于床體積,從而使分離的各峰不致于太擁擠。②梯度的上限要足夠高,使緊密吸附的物質(zhì)能被洗脫下來。③梯度不要上升太快,要恰好使移動(dòng)的區(qū)帶在快到柱末端時(shí)達(dá)到解吸狀態(tài)。目的物的過早解吸,會(huì)引起區(qū)帶擴(kuò)散;而目的物的過晚解吸會(huì)使峰形過寬。 |
圖16-6 梯度洗脫示意圖 |
⒊洗脫餾份的分析 按一定體積(5-10ml/管)收集的洗脫液可逐管進(jìn)行測(cè)定,得到層析圖譜。依實(shí)驗(yàn)?zāi)康牡牟煌,可采用適宜的檢測(cè)方法(生物活性測(cè)定、免疫學(xué)測(cè)定等)確定圖譜中目的物的位置,并回收目的物。 ⒋離子交換劑的再生與保存 離子交換劑可在柱上再生。如離子交換纖維素可用2mol/: NaCl淋洗柱,若有強(qiáng)吸附物則可用0.1mol/L NaOH洗柱;若有脂溶性物質(zhì)則可用非離子型去污劑洗柱后再生,也可用乙醇洗滌,其順序?yàn)椋?.5mol/L NaOH-水-乙醇-水-20%NaOH-水。保存離子交換劑時(shí)要加防腐劑。對(duì)陰離子交換劑宜用0.002%氯已定(洗必泰),陽離子交換劑可用乙基硫柳汞(0.005%)。有些產(chǎn)品建立用0.02%疊氮鈉。 ⒌離子交換層析的應(yīng)用 離子交換層析技術(shù)已廣泛用于各學(xué)科領(lǐng)域。在生物化學(xué)及臨床生化檢驗(yàn)中主要用于分離氨基酸、多肽及蛋白質(zhì),也可用于分離核酸、核苷酸及其它帶電荷的生物分子。 |
(三)高效液相層析法 |
高效液相層析法(HPLC)是近二十年來發(fā)展起來的一項(xiàng)新穎快速的分離技術(shù)。它是在經(jīng)典液相層析法基礎(chǔ)上,引進(jìn)了氣相層析的理論具有氣相層析的全部?jī)?yōu)點(diǎn)。由于HPLC分離能力強(qiáng)、測(cè)定靈敏度高,可在室溫下進(jìn)行,應(yīng)用范圍極廣,無論是極性還是非極性,小分子還是大分子,熱穩(wěn)定還是不穩(wěn)定的化合物均可用此法測(cè)定。對(duì)蛋白質(zhì)、核酸、氨基酸、生物堿、類固醇和類脂等尤為有利。
高效液相層析法的基本概念和分離理論與經(jīng)典的液相色譜法及氣相色譜法一致,因而其塔板理論及動(dòng)力學(xué)理論等都可用于高效液相層析。 ⒈高效液相層析儀 典型的高效液相層析儀包括輸液系統(tǒng)、層析柱與檢測(cè)系統(tǒng)三部分。流動(dòng)相用一高壓泵輸入。這種高壓泵應(yīng)滿足以下條件:①流量恒定,無脈動(dòng),并有較大的調(diào)節(jié)范圍。②能抗溶劑腐蝕。③有較高的輸出壓力,一般要達(dá)到15~300kg/c,也有的高達(dá)800kg/c。④泵的死體積要小。梯度洗脫裝置必須具備兩臺(tái)高壓泵,一臺(tái)輸送強(qiáng)溶劑,一臺(tái)輸送弱溶劑,兩泵運(yùn)轉(zhuǎn)速度用電腦控制,并可按一定的要求改變流動(dòng)相的組成,以改善分離效果。一般用微量注射器直接進(jìn)樣,也可采用六通閥門進(jìn)樣。HPLC中所用的檢測(cè)器最多應(yīng)用的是紫外吸收檢測(cè),靈敏度可達(dá)ng水平。此外,還有熒光檢測(cè)器、示差析光檢測(cè)器、電化學(xué)檢測(cè)器等。 ⑴液-固吸附層析:固定相是具有吸附活性的吸附劑,常用的有硅膠、氧化鋁、高分子有機(jī)酸或聚酰胺凝膠等。液-固吸附層析中的流動(dòng)相依其所起的作用不同,分為“底劑”和洗脫劑兩類,底劑起決定基本色譜的分離作用,洗脫劑起調(diào)節(jié)試樣組份的滯留時(shí)間長(zhǎng)短,并對(duì)試樣中某幾個(gè)組份具有選擇性作用。流動(dòng)相中底劑與洗脫劑成分的組合和選擇,直接影響色譜的分離情況,一般底劑為極性較低的溶劑,如正已烷、環(huán)已烷、戊烷、石油醚等,洗脫劑則根據(jù)試樣性質(zhì)選用針對(duì)性溶劑,如醚、酯、酮、醇和酸等。本法可用于分離異構(gòu)體、抗氧化劑與維生素等。 ⑵液-液分配層析:固定相為單體固定液構(gòu)成。將固定液的官能團(tuán)結(jié)合在薄殼或多孔型硅膠上,經(jīng)酸洗、中和、干燥活化、使表面保持一定的硅羥基。這種以化學(xué)鍵合相為固定相的液-液層析稱為化學(xué)鍵合相層析。另一種利用離子對(duì)原理的液-液分配層析為離子對(duì)層析;瘜W(xué)鍵合層析分:①極性鍵合相層析:固定相為極性基團(tuán),氰基、氨基及雙羥基三種。流動(dòng)相為非極性或極性較小的溶劑。極性小的組份先出峰,極性大的后出峰,這稱為正相層析法,適用于分離極性化合物。②非極性鍵合相層析:固定相為非極性基團(tuán),如十八烷基(C18)、辛烷基(C8)、甲基與苯基等,流動(dòng)相用強(qiáng)極性溶劑,如水、醇、乙腈或無機(jī)鹽緩沖液。最常用的是不同比例的水和甲醇配制的混合溶劑,水不僅起洗脫作用還可掩蓋載體表面的硅羥基,防止因吸附而至的拖尾現(xiàn)象。極性大的組份先出峰,極性小的組份后出峰,恰好與正相法相反,故稱反相層析。本法適用于小分子物質(zhì)的分離,如肽、核苷酸、糖類、氨基酸的衍生物等。離子對(duì)分配層析分:①正相離子對(duì)層析:此法常以水吸附在硅膠上作為固定相,把與分離組份帶相反電荷的配對(duì)離子以一定濃度溶于水或緩沖液涂漬在硅膠上。流動(dòng)相為極性較低的有機(jī)溶劑。在層析過程中,待分離的離子與水相中配對(duì)離子形成中性離子對(duì),在水相和有機(jī)相中進(jìn)行分配,而達(dá)到分離。本法優(yōu)點(diǎn)是流動(dòng)相選擇余地大,缺點(diǎn)是固定相易流失。②反向離子對(duì)層析:固定相是疏水性鍵合硅膠,如C18鍵合相,待分離離子和帶相反電荷的配對(duì)離子同時(shí)存在于強(qiáng)極性的流動(dòng)相中,生成的中性離子對(duì)在流動(dòng)相和鍵合相之間進(jìn)行分配,而得到分離。本法優(yōu)點(diǎn)是固定相不存在流失問題、流動(dòng)相含水或緩沖液更適用于電離性化合物的分離。 ⑶離子交換層析:原理與普通離子交換相同。在離子交換HPLC中,固定相多用離子性鍵合相,故本法又稱離子性鍵合相層析。流動(dòng)相主要是水溶液,pH值最好在被分離酸、堿的pK值附近。 |
(四)親和層析法 |
親和層析是利用待分離物質(zhì)和它的特異性配體間具有特異的親和力,從而達(dá)到分離目的的一類特殊層析技術(shù)。 具有專一親和力的生物分子對(duì)主要有:抗原與抗體、DNA與互補(bǔ)DNA或RNA、酶與它的底物或競(jìng)爭(zhēng)性抑制劑、激素(或藥物)與它們的受體、維生素和它的特異結(jié)合蛋白、糖蛋白與它相應(yīng)的植物凝集素等?捎H和的一對(duì)分子中的一方以共價(jià)鍵形式與不溶性載體相連作為固定相吸附劑,當(dāng)含有混合組份的樣品通過此固定相時(shí),只有和固定相分子有特異親和力的物質(zhì),才能被固定相吸附結(jié)合,其它沒有親和力的無關(guān)組份就隨流動(dòng)相流出,然后改變流動(dòng)組成份,將結(jié)合的親和物洗脫下來。親和層析中所用的載體稱為基質(zhì),與基質(zhì)共價(jià)連接的化合物稱配基。 親和層析純化過程簡(jiǎn)單、迅速,且分離效率高。對(duì)分離含量極少又不穩(wěn)定的活性物質(zhì)尤為有效。但本法必須針對(duì)某一分離對(duì)象,制備專一的配基和尋求層析的穩(wěn)定條件,因此親和層析的應(yīng)用范圍受到了一定的限制。 親和層析可用于純化生物大分子:稀溶液的濃縮;不穩(wěn)定蛋白質(zhì)的貯藏;從純化的分子中除去殘余的污染物;用免疫吸附劑吸附純化對(duì)此尚無互補(bǔ)配體的生物大分子;分離核酸是親和層析應(yīng)用的一個(gè)重要方面。 應(yīng)用實(shí)例:2-胰凝乳蛋白酶的提純 ⒈親和吸附劑(Σ-氨基-N-乙酰-D-色氨酸)的制備 取一定體積的Sepharose4B加100mgCNBr。攪拌混合物,滴加2-8mol/L NaOH,使溶液pH維持在11.0。20℃左右,8-12分鐘完成反應(yīng)。在布氏漏斗中抽濾活化的瓊脂糖,然后用20倍體積冷的0.1mol/L NaHCO3(pH9.0)溶液洗滌。將上述活化的Sepharose4B與等體積0.1mol/L NaHCO3(pH9.0并在冰箱中預(yù)冷)溶液混合,接著迅速加入α-胰蛋白酶抑制劑(Σ-氨基-N-乙酰-色氨酸甲酯)。抑制劑的最大用量為每毫升Sepharose 4B 65μmol/L。4℃緩慢攪拌約24小時(shí),而后再用水和緩沖液反復(fù)地洗至沒有游離的抑制劑為止。制得的親和吸附劑在50mmol/L Tris-HCl緩沖液(pH8.0)中保存?zhèn)溆谩?BR> ⒉分離 親和吸附劑裝柱后用50mmol/L Tris-HCl(pH8.0)緩沖液平衡(室溫)。樣品溶于同樣緩沖液中并上柱,再應(yīng)用同樣緩沖液淋洗柱子。流速為30-60ml/小時(shí),直至280nm無光吸收時(shí)停止洗滌,然后改用0.2mol/L醋酸緩沖液(pH3.0)洗脫。 |
(五)聚焦層析法 |
聚焦層析是一種操作簡(jiǎn)單、廉價(jià)的層析技術(shù)。它的原理是根據(jù)各種蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)不同進(jìn)行分離的過程,因此本方法具有高分辨、高度濃縮和高度專一等特點(diǎn)。聚焦層析所用的凝膠首先用高pH溶液平衡,然后用多元緩沖液進(jìn)行洗脫,多元緩沖液pH呈梯度下降。
聚焦層析所用凝膠主要有兩種:MONOP和多元緩沖液交換劑(PBE)。其中MONOP是帶孔小珠,孔中被帶正電荷的胺基填充,適用于高效聚焦層析。多元緩沖液交換劑是一種交換凝膠,適用作普通聚焦層析的介質(zhì)。各種凝膠性質(zhì)見表16-8。
NONOP可制成兩種高效液相柱:MONOP HR5/5(1ml),和MONOP HR5/20(5ml)。使用時(shí)根據(jù)樣品復(fù)雜性選擇相應(yīng)的柱。HR5/5分辨率為pI>0.2,HR5/20 pI>0.02。 多元緩沖液交換劑PBE,屬珠狀交換劑凝膠,有PBE 118(pH11-8)和PBE(pH9-4)。在聚焦層析時(shí),通過使用不同的洗脫液,可使交換容量發(fā)生改變,并且使pH達(dá)到更廣的范圍。 |